معلومة

هل للبرتقال اثار من النشا؟


هذا لتجربة كيميائية ، لذلك أريد فقط أن أعرف ما إذا كانت هناك آثار صغيرة من النشا في البرتقال ، وليس ما إذا كان يجب أن أتناول برتقالة لمحتواها من النشا ، أو شيء من هذا القبيل أم لا.


وفقًا للأكل الصحي ، يحتوي البرتقال على 8.98 جرام من السكر ولكنه لا يحتوي على أي نشا:

لا يخلق السكر الطبيعي الموجود في الفاكهة مثل هذه الاستجابة الكبيرة لأنه متوازن بمحتوى الألياف الموجود في الفاكهة. تحتوي موزة واحدة على 14.43 جرامًا من السكر ، مقارنة بـ 8.98 جرامًا فقط في البرتقال. أكبر فرق بين الاثنين هو كمية النشا التي يحتوي عليها كل منهما. لا يحتوي البرتقال على أي شيء ، بينما يحتوي الموز على 9.42 جرام من النشا.


المصادر متنوعة. تدرس هذه الورقة النشا في البرتقال (لا أستطيع الحصول على ورق كامل). ومع ذلك ، يذكر المؤلفون هنا أن البرتقال لا يحتوي عمليًا على أي نشا (حذار ، الصور مقلوبة). يشيرون إلى العمل من قبل

Stahl A.L. دراسات نضج الحمضيات ، 1938

واقتبس هذا العمل قائلا: "تم قياس محتوى النشا ليكون 0.07-0.13٪" في لب برتقال الأناناس. قارن ذلك بـ 22٪ من كمية نشا البطاطس (الكتلة الجافة).


هل للبرتقال اثار من النشا؟ - مادة الاحياء

التمثيل الغذائي هو مجموع التفاعلات الكيميائية في الكائن الحي. يمكن أن تكون ردود الفعل هذه تقويضية أو بنائية. تستخدم التفاعلات الابتنائية الطاقة لبناء جزيئات حيوية معقدة (فكر في المنشطات التي تبني كتلة العضلات). عادةً ما تأتي الطاقة اللازمة للتفاعلات الابتنائية من ATP ، والذي يتم إنتاجه أثناء التفاعلات التقويضية. تكسر التفاعلات التقويضية الجزيئات الحيوية المعقدة ، مثل الكربوهيدرات والدهون وتطلق الطاقة المخزنة بداخلها.

فكر في الأمر

  1. هل التنفس الخلوي ابتنائي أم تقويضي؟ يشرح.
  2. هل البناء الضوئي ابتنائي أم تقويضي؟ يشرح.

الإنزيمات عبارة عن بروتينات تسهل التفاعلات الكيميائية في الأنظمة الحية من خلال العمل كمحفزات في التفاعلات الكيميائية الحيوية. تعمل الإنزيمات على تسريع معدل التفاعل إما عن طريق تقريب المواد المتفاعلة إلى مسافة قريبة أو عن طريق الارتباط بمتفاعل واحد وتقسيمه إلى أجزاء أصغر. تمتلك الإنزيمات خاصية تُعرف بالخصوصية ، والتي تعني ببساطة أن كل إنزيم يحفز تفاعلًا كيميائيًا حيويًا محددًا. الإنزيمات هي جزيئات الحياة التي لا غنى عنها. تعمل الإنزيمات ضمن نطاق معين من درجات الحرارة وقيم الأس الهيدروجيني لهذا الإنزيم.


النضوج وفيتامين سي

باستخدام محلول اليود النشا ، سيقوم الطلاب بقياس كمية فيتامين سي في البرتقال الناضج ونصف الناضج وغير الناضج. سوف يتعلمون عن عدم استقرار فيتامين سي.

أسئلة البحث:

  • هل يوجد المزيد من فيتامين سي في البرتقال الناضج أو البرتقال غير الناضج؟
  • هل يوجد المزيد من فيتامين سي في البرتقال الذي تم وضعه على المنضدة مقابل البرتقال المخزن في الثلاجة؟
  • ما هي عواقب شراء المنتجات القديمة؟
  • كيف يمكنني قياس فيتامين سي في الأطعمة؟

فيتامين ج (المعروف أيضًا باسم حمض الأسكوربيك) غير مستقر للغاية وله مدة صلاحية قصيرة. في حين أن الفاكهة غير الناضجة تحتوي على تركيزات عالية من فيتامين سي ، فإن هذا يتضاءل مع نضج الفاكهة. مع تقدم الثمار الناضجة ، يستمر فيتامين سي في الاختفاء.

يمكن للطلاب تقييم هذه الظواهر باستخدام محلول النشا واليود. يتفاعل اليود مع النشا من خلال أن يصبح أرجوانيًا ما لم يكن فيتامين C موجودًا وهذا هو السبب في أن محلول اليود النشوي الأرجواني الغامق يتضح عندما يقطره الطلاب في عصير البرتقال. بينما يتبدد الوضوح بإضافة محلول نشا اليود الإضافي ، فإن التركيزات الأعلى من فيتامين سي تتطلب المزيد من محلول النشا اليود لمنع الخليط من التطهير.

المواد:

  • شعاع ثلاثي أو ميزان
  • نشا الذرة
  • 2 جالون ماء مقطر
  • إبريقان زجاجيان سعة غالون واحد (مثل عصير التفاح يباع في)
  • 50 مل حمض الهيدروكلوريك المركز
  • 13 جرام اليود
  • 20 جم يوديد البوتاسيوم
  • 250 أو 500 مل من Erlenmeyer
  • تخرج الاسطوانة
  • دورق سعة 1 لتر (الأنواع الأخرى من الحاويات الزجاجية ستفي بالغرض)
  • دورق سعة 250 مل
  • سحاحة
  • قمع
  • المشبك والوقوف لعقد السحاحة
  • البرتقال الناضج ونصف الناضج وغير الناضج
  • عصارة (اختياري)

على الرغم من أنه يمكن الحصول على الكواشف والأواني الزجاجية من مخزن إمداد المختبر ، نأمل أن يتمكن الطلاب من استعارة هذه من مدارسهم. يتوفر الماء المقطر في محلات البقالة الكبيرة أو من معمل مدرستك. نشا الذرة متاح في محلات البقالة. قد يكون من الأسهل الحصول على البرتقال غير الناضج إذا كنت تعيش في فلوريدا أو كاليفورنيا حيث يمكنك الحصول عليها من شجرة.

طريقة تجريبية:

قبل بدء التجربة ، قم بعمل حلين: (1) محلول تفاعل النشا و (2) 0.01 ن من اليود ، ويتم عمل هذين المحلين وفقًا للتوجيهات أدناه.

محلول النشا

  1. زن 1.2 جرام من مسحوق نشا الذرة وانقله إلى قدر صغير.
  2. اصنع ملاطًا من مسحوق نشا الذرة و 20 مل من الماء المقطر.
  3. أضف 180 مل إلى الملاط.
  4. يُغلى المزيج ويُحرّك (يمكن فعل ذلك فوق موقد المطبخ).
  5. املأ إبريقًا زجاجيًا سعة جالونًا بنصف جالون من الماء المقطر.
  6. أضف 47 مل من حمض الهيدروكلوريك المركز إلى إبريق سعة غالون واحد.
  7. أضف 20 مل من محلول نشا الذرة إلى إبريق سعة غالون واحد.
  8. املأ الإبريق بنصف جالون آخر من الماء.
  9. يقلب. غطي بغطاء وبطاقة.

0.01 ن محلول اليود

  1. قم بقياس 12.7 جم من اليود و 20 جم KI (يوديد البوتاسيوم) وانقلهم إلى دورق سعة 1 لتر.
  2. حل الكواشف في 100 مل ماء مقطر. يقلب.
  3. اجعل الحجم الكلي للمحلول يصل إلى 1000 مل.
  4. باستخدام اسطوانة متدرجة ، قم بقياس 378 مل من المحلول المصنوع في الخطوتين 1 و ndash 3 ونقله إلى إبريق زجاجي جالون. غطي بغطاء وبطاقة.

محلول النشا اليود

  1. قم بقياس 50 مل من محلول النشا وانقله إلى دورق مخروطي.
  2. قم بقياس 50 مل من محلول اليود وانقله إلى دورق Erlenmeyer ، مع التقليب مع محلول النشا حتى يختلط تمامًا. مع تغطية الفلين. ملصق

بروتوكول تجريبي

  1. ثبت السحاحة بحامل دائري. ضع دورق حجمه 250 مل تحت السحاحة. تأكد من إغلاق محبس الحنفية الموجود على السحاحة.
  2. باستخدام قمع ، أضف محلول اليود النشا إلى السحاحة ، وتأكد من أنه لا يملأ بشكل زائد. تدرب على فتح وإغلاق محبس الحنفية بحيث يمكنك بسهولة عد القطرات التي تخرج عند فتح محبس الحنفية.
  3. قم بإعداد أول عينة برتقالية عن طريق تقشير البرتقال غير الناضج ووضعه في عصارة أو عصر العصير يدويًا من البرتقال غير الناضج في دورق. تأكد من أن لديك ما لا يقل عن 100 مل من العصير في دورق ، باستخدام برتقال إضافي غير ناضج إذا لزم الأمر.
  4. ضع كوب عصير البرتقال تحت السحاحة وأضف محلول النشا واليود تدريجيًا ، مع حساب عدد القطرات كما تذهب. مع كل قطرة ، يتفاعل المحلول مع فيتامين سي ويصبح صافياً مؤقتًا. بمجرد تحييد كل حمض الأسكوربيك ، لن تصبح إضافة محلول النشا واليود واضحة ، ولكنها ستحتفظ بلونها الداكن بدلاً من ذلك. سجل العدد الإجمالي للقطرات التي استغرقتها للوصول إلى هذه النقطة.
  5. كرر هذه التجربة باستخدام برتقالة نصف ناضجة وبرتقالية ناضجة. ضع في اعتبارك تكرار التجربة لمقارنة الفاكهة الناضجة التي تُركت على المنضدة بالفاكهة الناضجة المبردة.

المصطلحات / المفاهيم: فيتامين ج (حمض الأسكوربيك ، باستخدام سحاحة وصنع المحاليل ، تركيز فيتامين ج كدالة لنضج الفاكهة وعمرها الاستقرار الكيميائي

هوبز وكريستوفر وأمبير إلسون هاس. فيتامينات للدمى. لمطبعة الدمى (1999)

كاثرين م.فيليبس وآخرون. & ldquo استقرار فيتامين سي في الفاكهة والخضروات الطازجة المجمدة

المجانسات & rdquo مجلة تكوين الأغذية وتحليلها. 23253 & ndash259 (2010)

معهد لينوس بولينج: فيتامين سي

إخلاء المسؤولية واحتياطات السلامة

يوفر موقع Education.com أفكار مشروع معرض العلوم للأغراض الإعلامية فقط. لا تقدم Education.com أي ضمان أو إقرار فيما يتعلق بأفكار مشروع Science Fair وليست مسؤولة عن أي خسارة أو ضرر ، بشكل مباشر أو غير مباشر ، ناتج عن استخدامك لهذه المعلومات. من خلال الوصول إلى Science Fair Project Ideas ، فإنك تتنازل وتتخلى عن أي مطالبات تنشأ عن موقع Education.com. بالإضافة إلى ذلك ، يتم تغطية وصولك إلى موقع Education.com على الويب وأفكار مشروعات معرض العلوم من خلال سياسة الخصوصية وشروط استخدام الموقع الخاصة بـ Education.com ، والتي تتضمن قيودًا على مسؤولية موقع Education.com.

يُعطى التحذير بموجب هذا أنه ليست كل أفكار المشروع مناسبة لجميع الأفراد أو في جميع الظروف. يجب تنفيذ أي فكرة لمشروع علمي فقط في الأماكن المناسبة وبإشراف من الوالدين أو أي إشراف آخر. تقع مسؤولية قراءة واتباع احتياطات السلامة لجميع المواد المستخدمة في المشروع على عاتق كل فرد. لمزيد من المعلومات ، راجع كتيب ولايتك لسلامة العلوم.


في هذا المشروع العلمي ، ستتعلم طريقة مثيرة للاهتمام لتحديد كمية فيتامين سي في المحلول. التقنية التي ستستخدمها تسمى المعايرة.

تستخدم المعايرة لتحديد التركيز غير المعروف لمادة كيميائية في محلول. في المعايرة ، تُضاف تدريجياً كمية مقاسة بعناية من مادة كيميائية ثانية إلى المحلول. تتفاعل المادة الكيميائية المضافة مع المادة الكيميائية الأصلية التي لا يُعرف تركيزها. المادة الكيميائية الأصلية تسمى تتراند، والمادة الكيميائية المضافة التي يُعرف تركيزها تسمى معاير، أو محلول المعايرة. يتفاعل محلول المعايرة مع المعايرة ، ويتم مراقبة تقدم هذا التفاعل بعناية. عندما يتفاعل 100٪ من المركب الأصلي مع المادة الكيميائية المضافة ، تكتمل المعايرة بالتحليل الحجمي. الآن يمكن تحديد تركيز المادة الكيميائية الأصلية من كمية محلول المعايرة الذي تمت إضافته.

حتى تتمكن من فهم كيفية عمل المعايرة بشكل أفضل ، دعونا نلقي نظرة على المثال المحدد لتحديد تركيز فيتامين سي. فيتامين سي ، المعروف أيضًا باسم حمض الاسكوربيك، هو titrand في هذه الحالة (لأن تركيزه غير معروف). تبدأ بحجم مُقاس للمعايرة. محلول المعايرة الذي سيُضاف إلى جهاز المعايرة هو اليود. ستبدأ باستخدام محلول اليود الخاص بك لمعايرة كمية معروفة من فيتامين سي ، باستخدام محلول محضر من قرص فيتامين سي. ستقيس بعناية كمية محلول اليود اللازم لمعايرة الكمية المعروفة من فيتامين ج. ستعرف متى تكتمل المعايرة لأنك ستضيف مادة كيميائية ثالثة ونشا قابل للذوبان و [مدشلتو] المحلول. النشا بمثابة مؤشر: النشا يغير لون المحلول عند اكتمال تفاعل اليود / فيتامين سي. بمجرد أن يتغير لون المحلول ، ستتوقف عن إضافة محلول اليود. بمجرد معايرة محلول اليود بكمية معروفة من فيتامين سي ، يمكنك بعد ذلك تكرار الإجراء لتحديد مقدار فيتامين سي الموجود في عينات عصير البرتقال الطازج.

يسمى التفاعل الكيميائي لليود مع فيتامين ج تفاعل الأكسدة والاختزال (غالبًا ما يستخدم الكيميائيون الاختصار "تفاعل الأكسدة والاختزال" للإشارة إلى هذا النوع من التفاعل). يتأكسد حمض الأسكوربيك إلى حمض ديهيدرو أسكوربيك ، ويتم تقليل اليود إلى أيونات يوديد. تحدث تفاعلات الأكسدة والاختزال دائمًا في أزواج مثل هذه. الجزيء الذي يفقد الإلكترونات هو مؤكسد، والجزيء الذي يقبل الإلكترونات هو انخفاض.

في مشروع علم الكيمياء هذا ، سوف تستقصي كيف تؤثر أوقات التخزين المختلفة على كمية فيتامين سي في عصير البرتقال الطازج. كيف تعتقد أن كمية فيتامين سي ستتغير بمرور الوقت ، إذا تغيرت على الإطلاق؟ استعد لإجراء بعض المعايرة لتكتشف بنفسك.


هل للبرتقال اثار من النشا؟ - مادة الاحياء

لاكين ألين ، ولاندون فوكس ، وجينا توماس ، وباولا رويز ، وكريستين كارول

البروتينات والسكريات البسيطة والدهون والنشا: تجربة

البحث عن وجود هذه في عصير الليمون والمكسرات

الملخص. لمعرفة ما إذا كانت المكونات (البروتينات ، والسكريات البسيطة ، والدهون ، والكربوهيدرات) كانت واضحة في هذه الأطعمة (عصير الليمون ، والمفرقعات) تم فحصها في تجربة صممها كيم ووتون. تتضمن عملية العثور على البروتينات خلط العنصر بـ 30 نقطة من كبريتات النحاس (CuSO 4) و 3 قطرات من هيدروكسيد الصوديوم (NaOH). تظهر نتيجة الاختبار الإيجابية بلون أزرق غامق وأرجواني تقريبًا. تتضمن عملية معرفة ما إذا كان عنصر الطعام يحتوي على سكر بسيط وضع العنصر الغذائي في أنبوب اختبار ، وخلطه مع محلول Benedict ، وتسخين الأنبوب بأكمله في حمام مائي مغلي. سيشار إلى الاختبار الإيجابي بتغيير اللون من الأزرق إلى البرتقالي. لمعرفة ما إذا كانت الدهون موجودة ، وضعنا قطرتين من المحلول الذي ابتكرناه (عصير الليمون ، أو مزيج الماء / التكسير) على قطرة من الورق البني. أشارت الشفافة إلى نتيجة اختبار إيجابية. أخيرًا ، لاختبار النشا ، وضعنا العنصر في أنبوب اختبار وخلطناه في قطرة من اليود. تمت الإشارة إلى نتيجة إيجابية بواسطة مسحة زرقاء في الأنبوب. (ووتون 2014). كشفت بياناتنا التي تم جمعها عن وجود السكر البسيط في كلا العنصرين ، ووجود البروتين في عصير الليمون فقط ، وظهور الدهون في أي منهما ، وظهور النشا في التكسير فقط. سيوضح هذا التقرير هذه العملية ونتائج البيانات من خلال الصور والكلمات.

في هذا المختبر نستكشف الكيمياء الحيوية للمكونات اللازمة للحياة. تتكون جميع الكائنات الحية من 4 مركبات عضوية: الكربوهيدرات والدهون والبروتينات والأحماض النووية. نستخدم هذه المركبات العضوية يوميًا في أجسامنا. تستخدم الدهون لتخزين الطاقة في الكائنات الحية وتوفر أيضًا الحماية والعزل. البروتينات الوفيرة عبارة عن إنزيمات تنظم التفاعلات الكيميائية. تستخدم الكائنات الحية هذه المركبات في عملية تسمى التمثيل الغذائي. تتكون هذه العملية من تكوين أنسجة عضلية (استقلاب) وتحطيم مواد مثل هضم الطعام للحصول على الطاقة (تقويض).

من أجل اكتشاف العديد من الطرق المختلفة التي نحصل بها نحن الكائنات الحية على هذه المركبات العضوية الأساسية ، يمكننا اختبار المواد الغذائية الشائعة التي نستهلكها. في هذا المعمل ، قررنا اختبار عصير الليمون والمقرمشات لمعرفة الدهون والنشا والسكريات البسيطة والبروتينات. أعطانا هذا فهمًا أفضل لما يمكن أن تحتويه الأطعمة الشائعة وكيف تتفاعل مع الكيمياء الحيوية الداخلية لدينا عندما نستهلكها.

أجريت هذه الدراسة في New Tech High @ Coppell ، في 11 سبتمبر 2014. أجرينا أربعة اختبارات على عنصرين مختلفين صالحين للأكل لمعرفة أي المركبات العضوية كانت موجودة. تضمنت الاختبارات الأربعة التي أجريناها السكر البسيط والنشا والبروتين والدهون. كانت مجموعتنا الخاضعة للرقابة عبارة عن أنبوب اختبار من الماء. لكل اختبار ، بدأنا بأنبوبين اختبار أحدهما مملوء بسائل تكسير مخفف والآخر مملوء بعصير الليمون. بعد ذلك ، نضيف كميات مختلفة من المحاليل المختلفة ، ونقوم بتسجيل نوع التفاعل الذي يحتوي عليه كل خليط. يمكننا معرفة حدوث رد فعل إيجابي إذا تغير اللون الأولي. إذا حدث رد فعل سلبي ، فلن يكون هناك تغيير في اللون.

بشكل عام ، كانت نتائج التجربة التي أجريناها كما هو متوقع. كانت النتيجة الوحيدة غير المتوقعة عند اختبار مزيج عصير الليمون هي اختبار البروتين ، والذي كان له رد فعل إيجابي طفيف للغاية. ينص ملصق التغذية على وجود 0 جرام من البروتين في الخليط ، لذلك يمكن أن يكون رد الفعل الإيجابي ناتجًا عن بقايا في أنبوب الاختبار الذي استخدمناه من التجارب السابقة. لم يكن لكل من اختبار الدهون والنشا أي تفاعل في اختبار الدهون ، ولم يكن هناك بقعة شفافة لأن عصير الليمون تبخر ، وفي اختبار النشا ، لم يكن هناك رد فعل لأن اللون لم يتغير بمجرد إضافة اليود. في اختبار السكريات البسيط ، بمجرد أن أضفنا 5 قطرات من بنديكت وقمنا بتسخين أنبوب الاختبار في حمام مائي مغلي ، تحول لون الخليط إلى اللون البرتقالي مما يشير إلى رد فعل إيجابي. عند اختبار البسكويت ، كان لكل من اختبار البروتين والدهون رد فعل سلبي ، لأنه في اختبار الدهون لم يكن هناك بقعة شفافة (خليط البسكويت المسحوق والماء قد تبخر) ، وفي اختبار البروتين لم يتغير اللون . كان لاختبارات السكريات والنشا البسيطة ردود فعل إيجابية ، حيث تغير اللون في كلا الخليطين بمجرد الانتهاء من تجاربهما.

من خلال تجاربنا ، اكتشفنا أن عصير ليمونادة Countrytime يحتوي على سكريات بسيطة ، ولكن ليس الدهون والنشا. تلقينا نتيجة إيجابية ضعيفة في اختبار البروتين. كان هذا غير متوقع ، لكننا نعتقد أن هذا كان إيجابيًا كاذبًا بسبب سوء تنظيف الأدوات من قبل المجموعة من قبل. كان من المتوقع وجود مؤشرات على السكريات البسيطة لأن عصير الليمون يحتوي بشكل عام على عصير الليمون. عندما اختبرنا الكسارة ، وجدنا أنها تحتوي على سكريات بسيطة ونشا ، لكنها لا تحتوي على دهون أو بروتين ، وهو ما كان متوقعًا.

كان الغرض من هذا المعمل هو تحديد القيمة الغذائية لعدد قليل من الأدوات المنزلية الشائعة التي يستخدمها معظمنا ويتعرض لها. نحن نعلم الآن أن مزيج Countrytime Lemonade لا يحتوي على الدهون أو النشا أو البروتين (على الرغم من وجود تناقض في بياناتنا المتعلقة بالبروتين) ، في حين أنه يحتوي على سكريات بسيطة. اكتشفنا أيضًا أن المقرمشات لا تحتوي على بروتين أو دهون ، لكنها تتكون من السكريات البسيطة والنشا. إن تمييز هذا النوع من المعلومات حول الأطعمة التي نتناولها أمر بالغ الأهمية لتعزيز أسلوب حياة صحي ونوعية حياة أفضل بشكل عام.

ريس ، ج.ب (2015). بيولوجيا كامبل: مفاهيم وتوصيلات أمبير (المجلد .8). نهر السرج العلوي ، نيو جيرسي: تعليم بيرسون.

نموذج تقرير مختبر - علم البيئة 101. (2004 ، 22 سبتمبر). تم الاسترجاع 11 سبتمبر ، 2014.


الأميليز في معمل النشا

في هذه التجربة سوف تلاحظ عمل الإنزيم الأميليز على النشا. يغير الأميليز النشا إلى شكل أبسط: السكر مالتوز، وهو قابل للذوبان في الماء. الأميليز موجود في لعابنا ، ويبدأ في التأثير على النشا في طعامنا أثناء وجوده في الفم.
سوف يؤدي التعرض للحرارة أو درجة الحموضة الشديدة (حمض أو قاعدة) تفسد البروتينات. الإنزيمات ، بما في ذلك الأميليز ، هي بروتينات. إذا تم تغيير طبيعة الإنزيم ، فلن يعد قادرًا على العمل كمحفز للتفاعل.
حل بنديكت & # 8217 هو كاشف اختبار يتفاعل بشكل إيجابي مع السكريات المختزلة البسيطة مثل المالتوز ، ولكنه لا يتفاعل مع النشا. لوحظ اختبار إيجابي على أنه تكوين ترسبات أكسيد نحاسي بني-أحمر. سيكون الاختبار الإيجابي الأضعف من الأصفر إلى البرتقالي.

يضيف 1 جرام من نشا الذرة إلى دورق يحتوي على 100 مل من الماء المقطر البارد. أثناء التقليب بشكل متكرر ، سخني الخليط حتى يبدأ في الغليان. تركه يبرد.

1. املأ الدورق سعة 250 مل حوالي 3/4 من الماء وضعه على الصفيحة الساخنة للاستحمام بالماء المغلي. حافظ على الماء فقط عند الغليان.

2. مارك 3 أنابيب اختبار أ, ب و ج. & # 8220 البصق & # 8221 بين 1 و 2 مل من اللعاب في كل أنبوب اختبار.

3. في الأنبوب أ، يضيف 2 مل من الخل. في الأنابيب ب و ج، يضيف 2 مل من الماء المقطر. اضرب الأنابيب لتختلط.

4. ضع الأنبوب ب في حمام الماء المغلي ل 5 دقائق. بعد مرور خمس دقائق ، أخرجه من الحمام وضعه مرة أخرى في رف أنبوب الاختبار.

5. إضافة 5 مل من محلول النشا لكل أنبوب وخفق للخلط. السماح للأنابيب بالجلوس 10 دقائق، وأحيانًا تضرب الأنابيب للخلط.

6. إضافة 5 مل من حل Benedict & # 8217s لكل أنبوب وربطة للخلط. ضع الأنابيب في حمام الماء الساخن. يستغرق رد الفعل عدة دقائق ليبدأ.

الة النفخ أ: نشاء + لعاب معالج بالخل (حامض)

ماذا يشير هذا؟ __________________________________________________

الة النفخ ب: نشاء + لعاب وماء يعالج في حمام مائي مغلي

ماذا يشير هذا؟ __________________________________________________

الة النفخ ج: نشاء + لعاب

ماذا يشير هذا؟ __________________________________________________

1. ما هي وظيفة الانزيم؟

2. أين ترتبط الركيزة بالإنزيم؟

3. إذا كان الإنزيم موجودًا في التفاعل ، فستكون هناك حاجة أقل من ________________ _________________ لبدء التفاعل.

4. ما هي اللاحقة الشائعة الموجودة في نهاية معظم الإنزيمات البيولوجية؟

5. معظم الإنزيمات عبارة عن جزيئات كبيرة تسمى ________________.

6. تعريف تمسخ البروتينات.

7. قم بتسمية 3 أشياء يمكن أن تفسد أو تتكشف عن إنزيم.

8. في هذا المختبر ، ما هو الحمض الضعيف الذي شوه البروتين؟

9. ما هو الغرض من وضع أنبوب اختبار واحد في حمام الماء الساخن؟


Phadebas في علم الأحياء الشرعي

تم استخدام Phadebas في علم الأحياء الشرعي لسنوات عديدة. المقالة الأصلية التي وصفت فائدة Phadebas® في الطب الشرعي تمت كتابتها بالفعل في عام 1974 *. بدأ كل شيء في المملكة المتحدة ولكن الاستخدام أصبح عالميًا الآن. في الأصل ، تم استخدام الاختبار للاختبار الافتراضي للبقع المشبوهة ، أي اختبار الأنبوب ، لكن بعض المعامل بدأت في سحق Phadebas Amylase Testablets ورشها على ورق الترشيح. تم استخدام هذه الأوراق كأجهزة بحث لتحديد مكان بقع اللعاب المخفية على العناصر ، مكملة لاختبار الأنبوب الذي يمكنه اختبار البقع المرئية فقط.

انتشرت هذه الطريقة ولكن مثل هذا الإجراء الفني تسبب في اختلافات كبيرة بين المختبرات. لحل هذه المشكلة ، بدأت Magle بالتعاون مع بعض مختبرات البيولوجيا الجنائية مشروعًا لتطوير أوراق Phadebas المصنعة مسبقًا. في عام 2007 ، تم إطلاق اختبار Phadebas Forensic Press Test للتأكد من أن جميع الأوراق

  • قابلة للتطبيق مباشرة من الحزمة
  • قم بتضمين رقم الدفعة وتاريخ انتهاء الصلاحية
  • يسهل التعامل معها واستخدامها
  • لديك اختلافات دفعة ضئيلة
  • لا تعطي فرقًا بين المختبرات وبالتالي تتمتع بمصداقية أعلى كمواد أدلة
  • يتم إنتاجها في منشآت نظيفة لتجنب مخاطر التلوث.

المبدأ الكامن وراء الاختبار هو أن Phadebas® ، الذي يتكون من كريات نشا مجهرية ذات صبغة زرقاء متصالبة بالنشا ، مثبتة على ورق ترشيح. في وجود الأميليز ، يتم هضم النشا ، وإطلاق الصبغة القابلة للذوبان في الماء ، والتي تنتشر عبر مسام ورق الترشيح. يتم ملاحظة اللون الأزرق الناتج بصريًا على الجانب غير الكاشف من ورق Phadebas®. يتم إجراء اختبار الضغط عندما يكون من الضروري تحديد موقع منطقة موجبة الأميليز على عنصر ما. إذا تم الحصول على رد فعل قوي للغاية من خلال اختبار الضغط ولم يكن هناك أي مادة ملوثة أخرى واضحة ، يتم تفسير ذلك على أنه مؤشر على وجود اللعاب. يوضح الرابط التالي المنهجية والبساطة مع نظرة عامة على اختبار Phadebas للطب الشرعي. للحصول على إرشادات مفصلة ، يرجى اتباع تعليمات اختبار Phadebas Forensic Press.

حدد الاختبار الداخلي في العديد من مختبرات الطب الشرعي المستقلة أنه لن يتفاعل سوائل الجسم الأخرى ذات الصلة بالطب الشرعي (العرق والسائل المنوي والإفراز المهبلي) في غضون 10 دقائق باستخدام البروتوكول الحالي ، حتى بعد الترسيب المتكرر. الاستثناء هو بقع البراز التي قد تحتوي على مستويات عالية من الأميليز مثل تلك الموجودة في اللعاب. لهذا السبب ، لا ينبغي تفسير الملاحظات الإيجابية داخل المناطق الملوثة بوضوح بالبراز لوجود اللعاب. يجب تسجيل وجود مادة برازية محتملة على أي عنصر في ملاحظات الفحص. في تجربة مستقلة أجريت في المملكة المتحدة ، تبين أن لعاب الحيوانات الأليفة الأكثر شيوعًا لا يؤدي إلى أي نتائج إيجابية خاطئة.

لضمان انتقائية اللعاب ، يجب ألا تكتشف الأوراق البقع التي يقل نشاط الأميليز فيها عن 2000 وحدة / لتر خلال 40 دقيقة من وقت الاختبار. لقد ثبت في العديد من المقالات العلمية أن اللعاب المخفف بنسبة 1: 100 يمكن اكتشافه بسهولة. لمزيد من المعلومات ، يرجى زيارة أرشيف Phadebas.

يعد اختبار أنبوب الطب الشرعي Phadebas أكثر حساسية من اختبار الضغط ويستخدم بشكل شبه كمي للاختبار الافتراضي لرواسب اللعاب. إذا اشتبه في أن البقعة المراد اختبارها هي بقعة لعاب ضعيفة ، أو إذا كان اختبار المادة الطافية من بقعة مستخرجة أو مسحة ، فإن اختبار أنبوب Phadebas يقدم طريقة أفضل من استخدام ورق Phadebas. يمكن أيضًا إجراء اختبار الأنبوب إذا تم اكتشاف الأميليز (باستخدام اختبار Phadebas® Forensic Press) في منطقة تظهر بها تلطيخ آخر مثل السائل المنوي أو الدم أو رواسب المهبل الثقيلة. يستخدم اختبار الأنبوب بطريقتين نوعي وكمي. يعتمد الاختبار النوعي على اختلاف اللون الملحوظ بين الاختبار الإيجابي والفارغ بينما يستخدم الاختبار الكمي قياس الطيف الضوئي للامتصاص لقياس نشاط α-amylase بدقة.

* اختبار محسن لاكتشاف الأميليز اللعابي في البقع ، ويلوت ، جي إم ، مجلة جمعية علوم الطب الشرعي 1974 14: 341-344


العلم المالح: هل يوجد اليود في ملحك؟

مقدمة
هل سبق لك أن لاحظت ما إذا كان الملح الذي تستخدمه يقول إنه & # 39 & يقتبس & quot؟ اليود من المغذيات الدقيقة ، مما يعني أننا نحتاجه بكميات صغيرة لنكون أصحاء. نظرًا لأن اليود نادر نسبيًا في العديد من الأنظمة الغذائية العادية ، فإنه يضاف إلى ملح الطعام. ثم عندما يملح الناس طعامهم ، مثل الديك الرومي اللذيذ والحشو والبطاطا المهروسة ، فإنهم يحصلون أيضًا على اليود. في هذا النشاط العلمي ، ستستخدم بعض الكيمياء الملائمة للمطبخ لاستكشاف أنواع الملح التي تحتوي على اليود والتي لا تحتوي على اليود. ثم عندما تجلس لتناول عشاء عيد الشكر ، يمكنك معرفة ما إذا كنت ستقدم الشكر أيضًا لأنك تساعد في مكافحة نقص اليود.

خلفية
المغذيات الدقيقة ، مثل اليود ، هي أنواع من العناصر الغذائية التي يحتاجها الناس بكميات صغيرة. اليود مهم لعمل الغدة الدرقية بشكل طبيعي. (الغدة الدرقية هي غدة في الرقبة تفرز هرمونات رئيسية.) توجد بكميات صغيرة في الأطعمة الأخرى ، بما في ذلك أسماك المياه المالحة والأعشاب البحرية والمحار والزبادي والحليب والبيض والجبن وحفنة من الأطعمة الأخرى. إذا كان الشخص لا يستهلك كمية كافية من اليود ، فيمكن أن يصاب بنقص اليود. يمكن أن يسبب نقص هذه المغذيات الدقيقة مشاكل طبية مختلفة (عادة بسبب قصور الغدة الدرقية الناجم عن الغدة الدرقية التي لا تنتج ما يكفي من الهرمونات). وتشمل هذه الحالات تضخم الغدة الدرقية (تورم واضح في الغدة الدرقية) وكذلك العيوب الخلقية الخطيرة. في الواقع ، يعد نقص اليود السبب الأكثر شيوعًا للتخلف العقلي الذي يمكن الوقاية منه.

يضاف اليود (على شكل يوديد) إلى ملح الطعام للمساعدة في منع نقص اليود. منذ الثمانينيات ، كانت هناك جهود لإضفاء اليود على الملح. لقد كانت هذه طريقة ميسورة التكلفة وفعالة لمكافحة نقص اليود في جميع أنحاء العالم ، ولكن ليس كل الملح يحتوي على اليود. ستتحقق مما إذا كانت الأملاح المختلفة تحتوي على اليود عن طريق مزجها مع نشا الغسيل ، الذي يشكل مادة كيميائية زرقاء أرجوانية و ndashcolour مع اليود. (يضاف الخل وبيروكسيد الهيدروجين إلى محلول الملح للمساعدة في حدوث هذا التفاعل الكيميائي.)

المواد
& bull أكواب بلاستيكية يمكن التخلص منها بحجم 10 أونصات أو أكبر. (بدلاً من ذلك ، يمكنك استخدام أكواب أصغر وتقليل النشاط).
& الثور الماء المقطر
أكواب قياس الثور
ملاعق قياس الثور
& bull محلول نشا الغسيل ، ويسمى أيضًا النشا السائل (بدلاً من ذلك ، يمكنك صنع محلول نشا مناسب عن طريق إذابة كوب واحد من الفول السوداني القابل للتحلل القائم على النشا في كوبين من الماء.)
& bull محلول مطهر اليود (اختياري) (استخدم إما صبغة اليود أو محلول بوفيدون اليود الموجود في قسم الإسعافات الأولية في متاجر البقالة والصيدليات. إذا لم يكن اليود مزودًا بقطارة ، فستحتاج أيضًا إلى قطارة دواء .)
ملاعق بلاستيكية يمكن التخلص منها
& bull على الأقل ثلاثة أنواع مختلفة من الملح للاختبار و [مدش] ، على سبيل المثال ، ملح الطعام العادي (غير المعالج باليود) ، ملح الطعام المعالج باليود ، ملح التخليل ، ملح الصخور ، ملح كوشير ، & quotlite & quot ، ملح البحر (إذا لم تستخدم محلول اليود المطهر ، قم بتضمين ملح الطعام المعالج باليود.)
& الثور 3 في المئة بيروكسيد الهيدروجين
& الثور الخل الأبيض

تحضير
& bull إذا كنت تستخدم محلول اليود المطهر ، يمكنك تحضير كوب تحكم إيجابي حتى تعرف كيف يجب أن يبدو التفاعل بين اليود والنشا. للقيام بذلك ، اسكب نصف كوب من الماء المقطر في كوب يمكن التخلص منه ، أضف نصف ملعقة صغيرة (ملعقة صغيرة) من محلول نشا الغسيل ثم أضف خمس قطرات من محلول اليود المطهر. كن حذرًا عند التعامل مع اليود لأنه قد يترك بقعًا.
& الثور يقلب جيدا بملعقة بلاستيكية يمكن التخلص منها. ماذا يحدث للسائل عند إضافة اليود؟

إجراء
& bull اختر أحد أنواع الملح التي تريد اختبارها وقياس أربع ملاعق كبيرة (ملعقة كبيرة) في كوب نظيف من البلاستيك يمكن التخلص منه. أضف كوبًا واحدًا من الماء المقطر إلى الملح وحركه جيدًا لمدة دقيقة تقريبًا بملعقة بلاستيكية نظيفة يمكن التخلص منها. لا تحتاج كل الملح ليذوب.
& الثور ثم أضف ملعقة كبيرة. من الخل الأبيض ملعقة كبيرة. بيروكسيد الهيدروجين ونصف ملعقة شاي. من محلول النشا. ما رأيك الغرض من النشا؟
& bull قم بتحريك محلول الملح جيدًا بالملعقة البلاستيكية التي يمكن التخلص منها ثم اترك المحلول يقف لبضع دقائق. ماذا يحدث للمحلول بعد تحريكه؟ هل يصبح لونه أزرق بنفسجي؟
كرر هذه العملية باستخدام أنواع أخرى مختلفة من الملح الذي تريد اختباره. لكل نوع ، تأكد من استخدام كوب وملعقة مختلفة ونظيفة يمكن التخلص منها. هل يتحول لون أي من المحاليل الملحية الأخرى إلى اللون الأزرق المائل إلى البنفسجي؟
&ثور بناءً على نتائجك ، ما هي الأملاح التي تعتقد أنها تحتوي على اليود (في شكل يوديد) وأيها لا يحتوي على اليود؟ هل تتفق نتائجك مع الملصق الموجود على عبوات الملح ، والذي يشير غالبًا ما إذا كان الملح يحتوي على اليوديد أم لا؟
&ثور إضافي: جرب هذا النشاط مع أنواع مختلفة من الأملاح. للحصول على بعض الأفكار ، راجع قائمة المواد أعلاه. ما هي أنواع الملح التي تحتوي على اليود والتي لا تحتوي على اليود؟ هل تتفق نتائجك مع تصنيفها؟
&ثور إضافي: في هذا النشاط قمت بإضافة الخل لأنه حمض ويساعد على حدوث التفاعل الكيميائي. حاول اختبار محلول الملح المعالج باليود مرة أخرى ولكن اترك الخل هذه المرة. هل لا يزال التفاعل يحدث ، ويحول المحلول إلى اللون الأزرق البنفسجي؟ إذا حدث رد الفعل ، فهل استغرق وقتًا أطول لحدوثه؟
&ثور إضافي: غالبًا ما تؤثر درجة الحرارة على التفاعلات الكيميائية. يمكنك تجربة هذا النشاط مرة أخرى ، ولكن اختبر محلول الملح المعالج باليود على درجات حرارة مختلفة (عن طريق تسخين الماء المقطر أو تبريده). كيف يغير تغيير درجة حرارة المحلول كيفية حدوث تفاعل تغير اللون؟

الملاحظات والنتائج
هل تغير محلول ملح الطعام المعالج باليود إلى اللون الأزرق المائل إلى البنفسجي عند خلطه بالنشا؟ هل تغير لون ملح الطعام & quotlite & quot بالمثل بينما لم يتغير لون معظم أنواع الملح الأخرى؟

في هذا النشاط ، يجب أن تكون قد لاحظت أن ملح الطعام المعالج باليود ومحاليل ملح الطعام & quotlite & quot تغيرت إلى اللون الأزرق البنفسجي (كما فعل محلول اليود المطهر ، إذا كنت تستخدمه). يشير هذا إلى وجود اليوديد في هذه الأنواع من الأملاح. من المحتمل أنك لم تلاحظ أي تغيير في اللون للحلول المصنوعة باستخدام الملح غير القابل للحل أو الملح الصخري أو ملح الكوشر أو ملح البحر لأن هذه الأصناف لا تحتوي عادةً على اليوديد.

تم استخدام محلول النشا في هذا النشاط لأنه يشكل مادة كيميائية زرقاء ارجوانية و ndashcolour عندما يقترن باليود. لأن المحلول و rsquos الأصلي يحتاج إلى تغيير لدرجة الحموضة لكي يحدث هذا التفاعل الكيميائي بشكل فعال ، يضاف الخل (حمض) أيضًا. يستخدم بيروكسيد الهيدروجين لتحويل يوديد الملح إلى اليود الذي يتفاعل معه النشا.

تنظيف
تأكد من غسل أي ملاعق قياس أو أدوات أخرى تلامس المحاليل التي تم إجراؤها في هذا النشاط العلمي جيدًا. يمكنك التخلص من المحاليل عن طريق سكبها في البالوعة.

المزيد للاستكشاف
مركز معلومات المغذيات الدقيقة: اليود ، من معهد لينوس بولينج ، جامعة ولاية أوريغون
نقص المغذيات الدقيقة: اضطرابات نقص اليود ، من منظمة الصحة العالمية
اختبار اليوديد في ملح الطعام (pdf) ، من ستيفن دبليو رايت ، مجلة التربية الكيميائية
تحديد محتوى اليوديد من الملح ، من Science Buddies

جلب لك هذا النشاط بالشراكة مع Science Buddies


أفضل 8 تجارب على النقل في النباتات

The following points highlight the eight experiments on translocation of plants. Some of the experiments are: 1. Demonstration of Upward Translocation from Germinating Seeds 2. To Show the Downward Translocation of Food in a Woody Stem (Or Effect of Ringing Upon Food Movement) 3. Demonstration of Translocation from Leaves 4. Demonstration of Upward Translocation of Food in Woody Stem and Others.

Experiments # 1

Demonstration of Upward Translocation from Germinating Seeds:

About 100 seeds of pea or gram or Vicia seeds are soaked in distilled water. The seeds are divided into two lots. One lot of seeds is taken out at the stage when seed coats can be removed. The fresh weight, dry weight and ash weight of this lot are determined.

The other lot is allowed to grow in dark.

As soon as the primary leaves appear in this lot, the cotyledons are separated from a few seedlings:

(i) The average dry weight of the cotyledons and the shoot,

(ii) The average ash weight and

(iii) The average loss or gain of the cotyledons and the shoots are sep­arately determined.

(i) Percentage loss of dry weight and ash weight of the cotyledons and

(ii) The corresponding percentage increase of dry and ash weights of the shoot are calculated from the data.

The cotyledons are the storehouse of growing embryo. As the embryo grows to a seedling, reserved food material is translocated to the seedling from cotyledons. So long the leaves are not formed, photo­synthesis cannot take place and seedlings remain entirely dependent on the cotyledons for their nourishment and growth.

In this experiment the seedlings are grown in dark in order to preclude the possibility of getting nourishment of the seedlings from the photosynthate.

Decrease of the food materials from the cotyledons and concomitant increase in the shoot indi­cates that food materials are translocated upward to the shoot at the cost of cotyledons. Some amount of food materials is lost by way of respiration or other catabolic processes in both cotyledons and shoots which may be taken here as insignificant.

Experiments # 2

To Show the Downward Translocation of Food in a Woody Stem (Or Effect of Ringing Upon Food Movement):

The experiment is to be performed with a woody plant in which the apical growth has ceased. It is best performed in growing season. One or more stems or branches are selected which have no side branch for 50 cm or more and which are several centimeters in diameter.

Ring is made by removing the bark and phloem tissue approximately in the middle of the clear portion. The removed rings of bark should be about 1 cm wide and ringing should be done carefully so that the xylem is not damaged.

The exposed surface of the xylem should be carefully scrapped with a sharp knife so that all traces of cambium are removed. The ex­posed surface is covered with paraffin wax. After three weeks, final growth measurements are taken.

Sections are cut 25 to 50 cm from the regions immediately above and below the ring and following data are taken:

(i) Sections from just above and just below the ring are tested for starch with iodine solution and compared.

(ii) The volumes of 100gm of tissue from below and above the ring is determined by displacement of water and compared.

(iii) The percentage of dry matter in each tissue is determined and compared.

Results are tabulated or plotted to show the effect of ringing upon translocation of food material based on the above three indices.

Food materials are synthesized in leaves and translocated downwards through the phloem. Removal of phloem tissue hampers this downward translocation and accumulation of food materials above the ring occurs. This experiment indicates that organic solutes flow downward through the phloem into root and other organs, when the above the indices below and above the ring are compared.

Experiments # 3

Demonstration of Translocation from Leaves:

Several seedlings of kidney bean (Phaseolus vulgaris) are chosen on which the first pair of primary leaves is well developed. Three sets of plants are exposed to bright sunlight until the leaves show heavy starch accumulation on test with 1% iodine.

One petiole of each pair of leaves is then treated by the following methods, leaving the second petiole and leaf intact as control:

(i) One petiole is cut off and kept in water for comparison with control leaf

(ii) Killing a portion of one petiole by a hot forceps (heating any other portion of the plant is avoided the leaf may be kept in position with the help of a thread) and

(iii) A portion of one petiole is anesthetised with chloroform or ether soaked in cotton. All the plants are kept in dark in a moist chamber at 20°C for 24 hour’s. Chloro­phyll is removed from the leaves with alcohol and a few drops of lactic acid and tested for starch with 1 % iodine solution.

The untreated leaves show little or no response with iodine test compared to treated ones.

Marked loss of starch from a leaf is taken as an evidence of downward translocation. Considerable retention of starch in a treated leaf indicates that starch has not been translocated due to interference in the translocatory path. The experiment thus shows that food material is translocated from leaves.

Experiments # 4

Demonstration of Upward Translocation of Food in Woody Stem:

The experiment can be best performed in growing season. Four approximately uniform twigs on a woody plant are selected. Potted woody plants or even cut branches with their basal ends immersed in water can be used in this experiment. When tested with iodine they show considerable quantity of starch.

Smooth-barked species with rather stout stems and with true terminal buds are most suitable If possible twigs should be selected from plants which bear no side branches for a distance of about 40 cm back from the terminal bud.

The selected branches are numbered. Twig number 1 is ringed about 5 cm, twig number 2 about 20 cm, and twig number 3 about 40 cm below the respective terminal buds. Twig number 4 is kept as control.

During ringing, a strip of bark is re­moved 0.5 cm wide and the exposed wood is carefully scrapped to remove all traces of cambium avoiding any damage to the xylem.

The exposed wood is coated with paraffin wax. Leaves and lateral buds are removed from the portions of the twigs above the rings as fast as they emerge from the stem.

On the control stem all the leaves and lateral buds which start to develop about 40 cm below the original location of the terminal bud are removed. The twigs are observed from time to time as growth proceeds from the terminal bud, noting especially differences in the rate of longi­tudinal growth.

After three weeks the stem elongation which has occurred from the terminal bud of each stem is measured and recorded in millimeters. Cross sections are cut from above and below the ring of each stem and tested for starch with iodine solution.

The rate of growth above the ring in case of number 1, 2 and 3 twigs is very much checked as compared with control. The growth that has occurred in the ringed stems is only due to upward translocation of food materials through xylem.

In case of control twig the upward trans­location has taken place both through xylem and phloem. It is also evident from the experiment that the more is the distance of the ring from the terminal bud, the less is the rate of growth above the ring. The accu­mulation of starch is always maximum just below the ring.

N.B. From the above experiment a correlation with translocation and growth may be made. The influence of phloem upon translocation and growth may also be studied by removing different amounts of phloem tissue from a particular region on the stem.

Experiments # 5

To Demonstrate the Exudation from Phloem Tissue:

Cucurbita seedlings are grown under favourable condi­tions until they have attained a length of 30 cm. The stem of one of the plants is cut off with a sharp scalpel from 5 to 10 cm above the soil surface. The cut end of the excised portion of the stem is held in an inverted position and observed under a powerful hand lens or binocular microscope for exuda­tion.

Exudation may also be studied by puncturing a sharp needle through the bark to a sufficient depth to just reach the inner layer of phloem.

It is observed from what tissue (xylem or phloem?) the exudate comes. If exudate cannot be discerned clearly in the excised by stem the first drop of exudate is blotted with a filter paper and the cut end is re-examined.

It is clear from the study that the sap comes out mainly through the phloem tissue in the form of droplets.

Experiments # 6

Demonstration of Translocation of Food into Developing Fruits:

Suitable species of fruit trees on which fruits of consider­able size usually develop are selected. The experiment should be started when the fruits on the tree are half-matured.

At least ten fruits are tagged and numbered and their circumferences are carefully measured. The fruits are isolated from the main phloem system of the plant by means of proper ringing. Rings may be made at the base of fruiting branch or both above or below its point of attachment on the stem.

All precautions are followed in ringing the stem. The circumferences of an equal number of fruits from un-ringed branches are also measured to serve as controls. From time to time both sets of fruits are measured and rates of growth in diameter of the fruits from the ringed and un-ringed branches are com­pared.

The rates of growth in diameter of fruits in ringed and control sets are recorded and compared.

The developing fruits are the active centres of mobilisation of carbohydrate from other regions of the plant. Since phloem is the principal path of translocation of food materials to the developing fruits, removal of phloem tissue greatly hampers this transport of carbohydrate to the growing fruits. Hence the growth rate of the ringed fruits is much less compared to controls.

Experiments # 7

Demonstration of Upward Translocation of Mineral Salts In-Woody Stem:

This experiment can be performed with potted woody plant as in Expt. 4. Three sets of at least five comparable branches on the plant are selected. In one Set all of the branches are ringed 5 cm below the base of each terminal bud. Rings are made about 0.5 cm wide, the ex­posed wood is carefully scrapped to remove all traces of cambium and the exposed surface is covered with paraffin wax.

In the second set all the branches are removed from the plant by making a sharp cut at the point corresponding to that at which the branches of the first set were ringed, i.e., 5 cm below each terminal bud. This set is used as ‘starting’ control.

In the third set all the branches are tagged at a point 5 cm below the terminal bud. At the end of three weeks the branches of the girdled set and the tagged set which is to serve as ‘end’ control are removed by cutting them off at the point of girdle and at the point of tagging respectively.

The ash content of the branches of the ‘starting’ control is determined at the beginning of the experiment and that of the ‘end’ control and of ringed branches at the end of the experiment, as follows.

The sample of stems to constant weight is dried in an oven at about 80°C and its dry weight is determined. Each sample is ground and mixed thoroughly. The ground dry tissue from each set of stem is weighed and heated to constant weight in a muffle furnace at about 600°C.

The estimated ash contents are expressed as percentages of the dry weight and fresh weight of stems.

The mineral from the soil solution is carried through the xylem in transpiration stream, though some amount of mineral is trans­located through phloem. As minerals are mainly translocated through the xylem, the removal of phloem tissue from the ring will not debar the stem above the ring from the supply of mineral nutrients.

When the ash content of the stems of three sets is compared, it becomes clear that percentage of ash content is maximum in case of the set where the branches were origin­ally removed 5 cm below the terminal bud and minimum in case of the set where branches remained intact. This shows that translocation of mineral solutes takes place mainly through xylem.

Experiments # 8

Demonstration of the Effects of Inhibitors on the Uptake, Distri­bution and Translocation of 32 P in Plants:

One-month-old bean seedlings grown in sand culture may be suitably employed in this study. The plants are removed from the culture taking sufficient care not to injure the roots.

Roots are then washed well to remove the adhering particles. These are then selected for treatment. Two such plants are taken and the roots are inserted in each of the six test tubes containing the following solutions (10 ml) and three test tubes may be bubbled for aeration.

Now from each leaf, discs are prepared with the help of a corkborer at different intervals, dried under infra-red lamp and its radio-activity is measured in a Geiger-Muller Counter. After 1 to 2 hr. the plants are taken out, roots are washed well with carrier phosphate (0.01 M Na2HPO4) and the distribution of radio-activity is determined by autoradiography as follows.

The plant is kept for sufficient time in contact with a suitable film in a dark room under some uniform pressure. [Half-life of 32P is to be taken into consideration (14.3 days)]. After exposure the film is developed and the spots of radio-activity are determined.

Exposure time = 10 7 / x min.

+3 days, where x is the count per minute (CPM) during experiment.

The uptake of 32 P by plants as affected by aeration, sodium arsenate and sodium azide is noted and data are tabulated.

The above experiment clearly demonstrates the transloc­ation of radio-active phosphorus to different organs of the plant. The translocation of phosphorus is a function of time and distance from the roots as indicated by the radio-activity in different plant parts.

Again metabolic inhibitors like azide or arsenate inhibit the rate of translocation indicating that it is regulated by the metabolism of living cells. Increased translocation with aeration suggests that respiratory energy is also involved in the translocation of phosphorus.


Bibliography

  • Andrew Weil, B. B. (2012, 10 29). WEIL. Retrieved from VITAMINS: https://www.drweil.com/vitamins-supplements-herbs/vitamins/vitamin-c-benefits/
  • Anne, M. (2013, 12 18). What Citrus Fruit Has the Most Vitamin C? Retrieved from Livestrong.com: http://www.livestrong.com/article/410729-what-citrus-fruit-has-the-most-vitamin-c/
  • AP Chemistry. (n.d.). Retrieved from http://drvanderveen.com/AP%20Chapter%2014%20Outline%202014.pdf
  • Boundless.com. (2016, 8 26). Retrieved from https://www.boundless.com/chemistry/textbooks/boundless-chemistry-textbook/chemical-kinetics-13/activation-energy-and-temperature-dependence-100/the-collision-theory-422-7067/
  • Difference Between Acid base titration and Redox titration. (2015, 12 3). Retrieved from PEDIAA: http://pediaa.com/difference-between-acid-base-titration-and-redox-titration/
  • Difference Between Acid-Base Titration and Redox Titration. (2015, 11 25). Retrieved from Difference Between.com: http://www.differencebetween.com/difference-between-acid-base-titration-and-vs-redox-titration/
  • Helmenstine, A. (2017, 4 6). Vitamin C Determination by Iodine Titration. Retrieved from ThoughtCo.: https://www.thoughtco.com/vitamin-c-determination-by-iodine-titration-606322
  • Material Safety Data Sheet HCl MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from Sciencelab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9924285
  • Material Safety Data Sheet Potassium Iodate MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from ScienceLab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9927571
  • Material Safety Data Sheet Potassoium Iodide MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from ScienceLab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9927231
  • Material Safety Data Sheet Starch Solution MSDS. (2013, 5 21). Retrieved from Sciencelab.com: http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9926918
  • Munyaka AW1, Makule EE, Oey I, Van Loey A, Hendrickx M. (2010, 5). Thermal stability of L-ascorbic acid and ascorbic acid oxidase in broccoli . Retrieved from NCBI: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20546391
  • OPEN CHEMISTRY DATABASE. (2011, 12 26). Retrieved from PubChem: https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/ascorbic_acid#section=Top
  • Oragnic Chemistry. (2015). Retrieved from http://www.chemistrylecturenotes.com/html/collision_theory__temperature_.html
  • Rate of Reaction. (n.d.). Retrieved from Chem4Kids.com: http://www.chem4kids.com/files/react_rates.html
  • Rate of reaction 2 – Reaction rate and changing conditions. (n.d.). Retrieved from BBC: http://www.bbc.co.uk/schools/gcsebitesize/science/add_ocr_gateway/chemical_economics/reaction2rev1.shtml
  • Vecchio, A. G. (2014, 12 16). The pro-healty potential of Kale. Retrieved from flipper e nuvola: http://flipper.diff.org/apprulesitems/items/7224
  • Vitamin C (ascorbic acid) oxidation & orange juice. (2016, 10 16). Retrieved from Food Chemistry : https://foodcrumbles.com/vitamin-c-orange-juice/
  • Wkikpedia. (2017, 5 5). Retrieved from https://en.wikipedia.org/wiki/Redox_titration