معلومة

تحديد كاتربيلر: بيرو


هل يمكنك مساعدتي في التعرف على هذه اليرقة (غابات الأمازون المطيرة ، بيرو)؟ هل هو نوع من Megalopygidae ؟؟؟


إنه عثة فلانيل وردية اللون لأنه لا توجد حشرة أخرى تشبهها

عادة ما يكون للعث الوردي الفانيلا مراكز برتقالية اللون


فيما يلي المراحل ، من بيضة إلى عثة بالغة.

عثة الكبار

المرحلة الأولى: مرحلة البيض أو المرحلة الجنينية

في هذه المرحلة ، يتطور الجنين داخل البويضة. تبدأ عملية البويضة عندما يتزاوج الذكور والإناث البالغون وينتج عن ذلك إخصاب البيض داخل العثة الأنثوية. ثم تجد أنثى العثة مكانًا لتضع فيه البيض ، فغالبًا ما تجد أماكن بها الكثير من النباتات. يعمل الغطاء النباتي كغذاء لكل من اليرقات واليرقات بعد الفقس من مرحلة البيض.

يستغرق البيض ما متوسطه من أربعة إلى عشرة أيام للحمل ، مما يعني أنه قد يستغرق ما يصل إلى 10 أيام حتى يفقس بعد وضعه. يتطلب الأمر ظروفًا بيئية مناسبة لتمكين البويضة من الحمل من البويضة إلى تكوين الأجنة والنضج النهائي للعثة.

يعد متوسط ​​الرطوبة ودرجة الحرارة الدافئة ضروريين في عملية الحمل لتكوين أجنة كاتربيلر. يعتمد الوقت الذي تستغرقه البيضة في الحمل على أنواع العثة ، ولكن يستغرق الحمل عمومًا 10 أيام في المتوسط ​​لأطول أنواع العثة.

يمكن أن تضع أنثى العثة ما بين 45 إلى 55 بيضة على مدار أسبوعين ، وتموت العثة بعد ذلك بوقت قصير. ومن المعروف أن الأنواع الأخرى تضع ما بين 200 و 300 بيضة في حياتها. يستغرق الجنين النموذجي ما متوسطه عشرة أيام لينمو ويمتص مغذيات البيض ثم يفقس في يرقة تعرف باسم كاتربيلر.

المرحلة الثانية: مرحلة اليرقات

بعد أن تفقس اليرقة ، تأكل القشرة أولاً من مكان ظهورها. يحتوي على الكثير من البروتينات والفيتامينات ، من بين العناصر الغذائية الأساسية الأخرى الضرورية لبقاء اليرقة ونموها وتطورها.

عندما تفقس كاتربيلر ، فإنها تكون في مرحلتها الأولى. الأطوار هي مراحل تطور اليرقات العثة. يمر العث عمومًا بالانسلاخ والتساقط مما يعني أن جلودهم وقشرتهم لا تنمو أبدًا مع أعضائهم الداخلية.

يحتاج جلدهم إلى تساقط للسماح للجلد الجديد بالتطور لمواكبة حجم اليرقة المتزايد باستمرار. يشار إلى الجلد أو القشرة أيضًا باسم بشرة.

بمجرد أن تفقس ، تكون اليرقة في مرحلتها الأولى حتى قبل أن تنسلش أو تتساقط جلدها. غالبًا ما تستهلك اليرقات بشرتها الأولى بعد التخلص منها نظرًا لاحتوائها على الكثير من البروتينات والمغذيات والعناصر الغذائية الأساسية الأخرى.

بعد فترة وجيزة من التخلص من قشرتها الأولية ، تعتبر في مرحلتها الثانية.

تبدو بعض أنواع كاتربيلر مختلفة بعد كل طور بينما يظهر البعض الآخر أن الحذاء الأكبر يحافظ على مظهرها. يعتمد عدد الأطوار التي تمر بها اليرقة على عوامل مثل المناخ ونوع الطعام الذي تستهلكه وأنواع العثة.

تستهلك اليرقات حوالي 2700 ضعف وزن جسمها. الأكل يمكّنهم من النمو بشكل كبير ويهيئهم أيضًا لمرحلة حياتهم التالية ، مرحلة الخادرة. يعتمد الوقت الذي تستغرقه اليرقة للبقاء في مرحلة اليرقة على التغيرات المناخية وكمية الطعام وجودة الغذاء وأنواع اليرقة.

تستمر اليرقة في الانسلاخ والأكل حتى تصل إلى الطور الأخير وهو الوقت المناسب لتصبح خادرة. عند الاستعداد للشرانق والتحول إلى عثة ، ستبتعد اليرقة عن بيئتها وتجد موطنًا جديدًا رطبًا وآمنًا من الحيوانات المفترسة ودافئًا. عند العثور على الموقع المناسب ، تقوم اليرقة بإلقاء آخر بشرة ، والتي عادة ما تكون صلبة وتبدأ في التحول إلى مرحلة الخادرة.

المرحلة الثالثة: مرحلة خادرة

مرحلة الخادرة هي جزء مثير من دورة حياة العث. في هذه المرحلة ، تتحول اليرقة إلى فراشة بالغة ، وتطور أجنحة أيضًا. عندما تكون العثة في مرحلة خادرة ، فإنها تبني جسمها حول هيكل يُشار إليه باسم الشرنقة.

تقوم اليرقات دائمًا بغزل الحرير الذي تصنعه من البروتينات التي تنتجها. تقوم اليرقة بتدوير الحرير في شرنقة حيث يحدث التحول. يوفر الغلاف حماية لليرقات الضعيفة ، ويحافظ على احتواء جميع الأعضاء.

تستهلك اليرقة الطعام الذي أكلته خلال مرحلة اليرقات أثناء وجودها في هذه المرحلة من الخمول. تعتبر مرحلة الخادرة كثيفة الاستهلاك للطاقة ، ومن ثم تتطلب اليرقة قدرًا كبيرًا من الطاقة من أجل أن يحدث التحول ، المعروف أيضًا باسم التحول.

تخضع اليرقة لعملية تعرف باسم التحلل النسيجي ، حيث تظل الخلايا التحويلية الفردية نائمة وغير مرئية في مرحلة الخادرة. تقوم الخلايا المتخصصة بتفكيك اليرقة إلى كومة من الخلايا.

عملية الإصلاح ، المعروفة باسم تكوين الأنسجة ، هي المكان الذي تقوم فيه الخلايا المتخصصة بتنظيم كل من الحمض النووي والخلايا في الشرنقة ، وبالتالي تشكل عثة بالغة.

يعتمد الوقت الذي تستغرقه كاتربيلر في مرحلة اليرقة على حجم العثة والنوع والبيئة. في المتوسط ​​، تستغرق العث ما بين 5 إلى 21 يومًا لتصبح شرنقة لتصبح عثة كاملة النمو.

المرحلة الرابعة: عثة بالغة

يعتبر النمو ليصبح عثة بالغة المرحلة الأخيرة في دورة الحياة هذه ، وأصبح للعثة الآن أجنحة. تُعرف العثة البالغة أيضًا باسم إيماجو. يستغرق الأمر وقتًا حتى يخرج إيماجو من الشرنقة حيث يظهر ضعيفًا وهشًا ولينًا.

الخروج من الشرنقة شديد ، تخرج العثة وبطنها منتفخة وذبلت الأجنحة ، وبالتالي فهي غير قادرة على الطيران في ساعاتها الأولى.

العثة البالغة لها دملمف ، وهو سائل جسدي. يستغرق العث ساعات لضخ هذا السائل في الأجنحة وتمكينه من تحقيق حجم الجسم بالكامل والطيران.

توضيح للدورة


مداها واسع ، من أمريكا الجنوبية إلى جنوب كندا ، ولا سيما جنوب غرب أونتاريو. [2] وهي الأكثر شيوعًا من الأرجنتين إلى جنوب تكساس وجورجيا وفلوريدا ، ولكن غالبًا ما يكون الزوار خارج هذا النطاق أكثر ندرة في الشمال.

الموائل المشتركة لهذه الفراشة هي المساحات المفتوحة ، والحدائق ، والزجاج ، وشواطئ البحار ، والمجاري المائية.

تتغذى الفراشة البالغة على الرحيق من العديد من الأزهار المختلفة ذات الأنابيب الطويلة بما في ذلك كورديا ، الجهنمية ، زهرة الكركديه ، الكركديه ، لانتانا ، ومجد الصباح البري. تتغذى اليرقات أيضًا على نبات السنا والبازلاء. [3]

سينا هيبكاربا (السنا الأمريكي) هو مضيف يرقات ومصدر رحيق لفراشة الكبريت الصافية في شرق الولايات المتحدة. [4]

يعتمد موسم التكاثر على مناخ المنطقة ، من منتصف الصيف إلى الخريف في المناطق الأكثر برودة ، إلى مدار العام حيث يكون المناخ أكثر دفئًا.

تحرير البيض

يبدأ الكبريت الصافي على شكل بيضة بيضاء على شكل إبريق. في النهاية سوف يتحول إلى اللون البرتقالي الباهت. تستمر مرحلة البيض ستة أيام.

تحرير كاتربيلر

بمجرد أن تفقس البيضة ، تظهر كاتربيلر لونها أصفر إلى أخضر ، مقلم من الجانبين ، مع وجود نقاط سوداء في صفوف عبر الظهر. قد يكون النبات المضيف عبارة عن بازلاء الحجل (تشاماكريستا سينيريا) ، سينا ​​(شجرة القرفة) ، [5] البرسيم (تريفوليوم) ، أو البقوليات الأخرى (البقولية). عادة ما تنمو كاتربيلر بطول يتراوح بين 41 و 45 ملم (1.6 و 1.8 بوصة).

تحرير الشرنقة

ستشكل اليرقة شرنقة مدببة من كلا الطرفين ومحدبة في المنتصف. سيكون الشرنقة إما أصفر أو أخضر مع خطوط وردية أو خضراء. من الشرنقة تأتي فراشة متوسطة الحجم (55-70 مم (2.2-2.8 بوصة)) بأجنحة ممدودة إلى حد ما ولكن ليست بزاوية.

تحرير الكبار

الفراشة الذكر صفراء صافية من الأعلى وصفراء أو مرقطة باللون البني المحمر من الأسفل ، والأنثى ليمون أصفر إلى ذهبي أو أبيض على كلا السطحين ، مع كميات متفاوتة من البقع السوداء على طول الهامش ومربع أسود مفتوح أو نجمة في أسفل المقدمة. باع الجناح: 63-78 ملم (2.5 - 3.1 بوصة).


الحركة في اليرقات

تتحرك معظم أنواع اليرقات عن طريق الزحف أو الزحف ببطء. إن قدرتهم على التنقل في الهياكل المتفرعة ثلاثية الأبعاد تجعلهم موضوعات ميكانيكية حيوية مثيرة للاهتمام بشكل خاص. لم يتم التحقيق في آلية التحرك البطيء بالتفصيل ، ولكن الزحف أصبح مفهومًا جيدًا الآن من الدراسات التي أجريت على النشاط العصبي والديناميكيات والميكانيكا الهيكلية. تصف الأوراق المبكرة زحف اليرقات بأنه تمعج أرجل ، لكن العمل الأخير يشير إلى أن اليرقات تستخدم آلية قائمة على التوتر تساعدها على استغلال المنافذ الشجرية. اليرقات لا تلزم الهيدروستات بل تستخدم بدلاً من ذلك قبضتها القوية على الركيزة لنقل القوى ، في الواقع باستخدام بيئتها كهيكل عظمي. بالإضافة إلى ذلك ، فإن القناة الهضمية التي تمثل جزءًا كبيرًا من وزن اليرقة ، تتحرك بشكل مستقل عن جدار الجسم أثناء الحركة وقد تساهم في ديناميكيات الزحف. يُظهر تحليل حلقة العمل لعضلات اليرقة أنه من المحتمل أن تعمل كمحركات ومشتت للطاقة أثناء الزحف. نظرًا لأن أنسجة اليرقة شبه مرنة ، وتنطوي الحركة على تشوهات كبيرة للجسم ، فإن الحركة غير فعالة من حيث الطاقة. إن امتلاك جسم ناعم يفيد اليرقات من خلال السماح لها بالنمو بسرعة والوصول إلى مصادر الغذاء البعيدة بأمان.

الكلمات الدالة: Manduca sexta كاتربيلر ديناميكيات حركية الحركة لينة الجسم.

© 2014 المؤلفون. المراجعات البيولوجية © 2014 Cambridge Philosophical Society.


المواد والطرق

جمع وتعفير المظلة

تم إجراء تعفير المظلة بواسطة AmH und AF من الأرض باستخدام مبيد الضباب Swingfog SN 50 ، باستخدام Pyrethrum الطبيعي ، المخفف بزيت أبيض شديد الانحدار ، كعامل تقويض لمنع إدخال المواد الكيميائية الثابتة في البيئة. للحصول على تفاصيل حول إجراءات التعفير ، انظر [28]. في معظم الحالات ، تم اختيار الأشجار ذات الغطاء النباتي الكثيف والمظلة الصغيرة التي تتداخل مع الأشجار المجاورة. تأكدنا من وصول الضباب إلى المظلة ووقفنا هناك لمدة خمس دقائق على الأقل للتأثير على المفصليات. من أجل تثبيت أوراق التجميع ، تم إزالة الشتلات الكبيرة وعناصر النباتات المتداخلة الأخرى أسفل منطقة إسقاط الأشجار. تم جمع جميع الكائنات الحية المتساقطة من الأشجار بعد ساعة واحدة على الأقل من التعفير من صفائح بلاستيكية ممتدة بحجم 20 م 2 ، تغطي ما لا يقل عن 80 ٪ من مظلة الشجرة المستهدفة. تم تجميع جميع مفصليات الأرجل في كل حدث من حالات الضباب ثم نقلها إلى مرطبانات ذات علامات دقيقة مع إيثانول بنسبة 100٪ دون فرز مسبق. في اليوم التالي تم تجديد الإيثانول وإزالة المواد النباتية الزائدة التي تحتوي على نسبة عالية من الماء. تم تخزين العينات في درجة حرارة الغرفة لمدة تصل إلى أسبوعين أثناء وجودها في محطة الأبحاث Panguana. تم تجديد الإيثانول مرة أخرى عند إضافة العينات إلى Zoologische Staatssammlung München في بافاريا ، ألمانيا (SNSB-ZSM).

يقع موقع الدراسة في أقصى غرب حوض الأمازون ، شرق وسط بيرو ، مقاطعة Huánuco ، في محطة ACP Panguana (-9.613393 ° شمالاً -74.935911 ° شرقًا 222 مترًا انظر أيضًا [29]) ، كانت الأشجار المستهدفة الضبابية تقع جميعها في نصف قطر أقل من 2000 متر حول المحطة. تم إجراء التجميع في وقت متأخر من بعد الظهر ، بين الساعة 17 والساعة 19:00 ، من 24 نوفمبر إلى 8 ديسمبر 2017. لتحديد الأشجار المستهدفة ، انظر النتائج.

تم إصدار تصاريح التجميع بواسطة Servicio Nacional Forestal y de Fauna Silvestre SERFOR: رقم 007-2014-SERFOR-DGGSPFFS + رقم 0406-2017-SERFOR-DGGSPFFS ، تصاريح التصدير الحيوانية: رقم 003236-SERFOR 003281-SERFOR 003320-SERFOR export تصاريح فلورا: رقم 003284-SERFOR + قرار التوجيه العام رقم 161-2018-MINAGRI-SERFOR-DGGSPFFS رقم 003333-SERFOR. تم منح الوصول إلى الموقع الميداني من قبل SERFOR ومحطة الأبحاث البيولوجية ACP Panguana. لم تكن هناك حاجة لمزيد من الموافقة الأخلاقية لتحليل البيانات ، حيث لم يتم إجراء تجارب في الجسم الحي.

أخذ عينات الأنسجة وتحديد اليرقات (DNA barcoding ، COI)

من بين 47 عينة - كل منها تشير إلى شجرة ضبابية (راجع الجدول 3 والجدول S1) - تم فصل جميع يرقات قشريات الأجنحة ، في إجمالي 130 عينة. تم تجفيف اليرقات على الورق وتصويرها ثم تخزينها بشكل منفصل في أنابيب إيبندورف. ترد قائمة بجميع اليرقات الـ 130 إلى جانب عدد عينات التبخير في الجدول 1 ، وترد الأمثلة في الشكل 1. تم أخذ عينات الأنسجة لجميع اليرقات الـ 130 باستخدام المقص والكماشة ، والتي تم تنظيفها بعناية بعد كل عينة من الأنسجة في 100 نسبة كحول تليها التعرض لموقد لتجنب التلوث بين العينات. تم نقل الأنسجة (قطعة واحدة مقطوعة رأسياً ، في يرقات صغيرة جداً شريحتين) إلى صفيحة تحلل ، مع إضافة 0.5 مل من الكحول 100٪ لكل بئر على اللوحة. تم استخدام بئر واحد في كل لوحة للتحكم السلبي.

(العلوي) الصف 1: عدد اليرقات. 5 ، 13 ، 26 صف 2: عدد. 28 ، 46 ، 52 صف 3: عدد. 62 ، 65 ، 71 صف 4: عدد. 81 ، 83 ، 85 صف 5: عدد. 88 ، 93 ، 100 صف 6: عدد. 109 ، 113 ، 115 (أسفل) الصف 7: لا. 119 ، 122 ، 124 (أرقام وتحديد اليرقات انظر الجدول 2).

تم تقديم عينات الأنسجة إلى الإجراءات القياسية للمركز الكندي لتشفير الحمض النووي DNA (CCDB) لتسلسل جين أوكسيديز السيتوكروم 5 في الميتوكوندريا ، الوحدة الفرعية 1 (COI) ، العلامة القياسية لتحديد معظم الحيوانات. LepF1 و LepR1 كانتا البادئات المستخدمة في تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) والتسلسل [30]. تم تفجير التسلسلات على قاعدة بيانات التسلسل الكاملة لأنظمة Barcode of Life Data (BOLD ، [13]) من أجل التأثير على أقرب التطابقات باستخدام محرك تحديد الهوية BOLD (http://www.boldsystems.org/index.php/ IDS_OpenIdEngine ). كما تم دراسة مورفولوجيا اليرقات والعثة البالغة (القريبة وراثيا) لاختبار موثوقية النتائج. تتبع تسمية أسماء الأصناف العلمية الكتالوج المستخدم في قاعدة بيانات BOLD ، والتي تتوافق في العديد من العائلات مع الكتالوجات المتوفرة حاليًا (على سبيل المثال [31] لـ Geometridae). يتم تخزين قسائم اليرقات في Zoologische Staatssammlung München ، ألمانيا. التسلسلات والصور والبيانات الوصفية ذات الصلة متاحة الوصول المفتوح على BOLD ضمن مجموعة البيانات DS-PANLARVA (dx.doi.org/10.5883/DS-PANLARVA).

أخذ عينات الأنسجة والتعرف على التشكل للأشجار المستهدفة

تم تحديد 47 شجرة مستهدفة مسبقًا في الحقل بناءً على التشكل (شكل نمو الأشجار وشكل الأوراق ، نادرًا ما تزهر أو ثمار) من قبل القائم بالأعمال المحلي لمحطة بانغوانا ، "مورو" كارلوس فاسكيز مودينا ، إلى الأسماء العامية البيروفية (انظر الجدول 3 وجدول S1) ، والتي لا يمكن عادةً الإشارة إليها بشكل لا لبس فيه إلى أسماء النباتات العلمية. للحصول على تخصيص مؤقت للأسماء العامية إلى الأصناف النباتية ، انظر جدول S1. لتسميات أسماء النباتات ، نتبع "قائمة النباتات" (متوفرة على الإنترنت على www.theplantlist.org/1/). بالنسبة لمعظم الأشجار المستهدفة ، تم جمع غصن صغير وضغطه وحفظه في معشبة لتحديد الهوية. تم تحديد مجموعة مختارة من الأوراق التي تم أخذ عينات منها بواسطة Hamilton Paredes ، Museo de Historia Natural ، Lima. تم قطع قطعة صغيرة من الأوراق كعينة من الأنسجة لتشفير DNA-Barcoding. بالإضافة إلى ذلك ، تم أخذ عينات أنسجة sapwood / cambium من كل شجرة مستهدفة باستخدام مثقاب جلدي لاستخراج لب من الساق. بعد ذلك ، تم قطع شريحة رقيقة من خشب العصارة / الكامبيوم وتجفيفها على الفور فوق هلام السيليكا.

تحديد الأشجار المستهدفة من خلال تشفير الحمض النووي الشريطي (trnL-F و rbcL و amp psbA)

نظرًا لحالات عدم اليقين المذكورة أعلاه بشأن التحديد المسبق للأشجار المستهدفة ، فقد قدمنا ​​عينات من الأنسجة النباتية إلى تشفير الحمض النووي الشريطي. لهذا الغرض ، تم توفير الأوراق لـ 37 من أصل 47 شجرة مستهدفة ، وقطع الكامبيوم + خشب العصارة لـ 46 شجرة. تم تقديم الأنسجة النباتية (الأوراق) لتسلسل سانجر (AIM Advanced Identification Methods GmbH- www.aimethods-lab.com) مع اثنين من العلامات ، rbcL و psbA باستخدام البروتوكولات المعيارية التالية [32،33]. تم إجراء محاولة إضافية في CCDB (Guelph ، بادئات كندا: trnL-F ، إجراء تسلسل Sanger القياسي rbcL) باستخدام كل من الأوراق وعينات خشب العصارة ، وهذا الأخير يكمل تلك الحالات التي لم تكن فيها أوراق متاحة للدراسة. تمت إضافة العلامة الثالثة (trnL-F) لمزيد من حل التحديد على مستوى الجنس والأنواع في بعض الحالات. تم تفجير جميع التسلسلات الناتجة ضد بيانات GenBank (NBCI) و BOLD باستخدام وظائف الانفجار القياسية. التسلسلات والبيانات الوصفية ذات الصلة متاحة الوصول المفتوح على BOLD ضمن مجموعة البيانات DS-PANPLANT (dx.doi.org/10.5883/DS-PANPLANT).

تحليل محتوى القناة الهضمية (rbcL ، psbA)

بالنسبة لمجموعة فرعية من عشر يرقات ، تم اختبار تحليل محتوى القناة الهضمية من أجل التحديد الجزيئي للنظام الغذائي "الحقيقي" لليرقات. لهذا الغرض ، أجرينا قطعًا رأسيًا ثانيًا وقدمنا ​​جزءًا واحدًا من اليرقة إلى تسلسل عالي الإنتاجية (HTS) باستخدام علامتين rbcL و psbA. تم تجفيف شرائح اليرقات المقطوعة وتجانسها واستخراج الحمض النووي باستخدام مجموعة نبات DNEasy (Qiagen ، Hilden ، ألمانيا). من كل عينة ، تم استخدام 5 ميكرولتر من الحمض النووي الجيني المستخرج ، جنبًا إلى جنب مع نبات TAQ (Bioline ، Luckenwalde ، ألمانيا) ، وتسلسل عالي الإنتاجية (HTS) بادئات الباركود المصغرة (trnH-psbA-f 5'-CGC GCA TGG TGG ATT CAC AAT CC-3 '، trnH-psbA 5'-GTT ATG CAT GAA CGT AAT GCT-3' ، [32،33] ، باستخدام شروط PCR 95 ° C-4'-35x 94 ° C-30 ”/ تم تطبيق 55 ° C-30 ”/ 72 ° C-1'-72 ° C-10 ') على تفاعل البوليميراز المتسلسل. لوحظ نجاح التضخيم وطول الشظية باستخدام الرحلان الكهربائي للهلام. تم تنظيف الحمض النووي المتضخم وتعليقه في 50 ميكرولتر من الماء الجزيئي لكل عينة قبل المتابعة. تم استخدام المنتجات التي تم تضخيمها بنجاح لتفاعل تفاعل البوليميراز المتسلسل اللاحق الذي يضيف مؤشرات Illumina Nextera XT لكل منتج من منتجات تفاعل البوليميراز المتسلسل ، مما يتيح وضع علامات فريدة لكل عينة. تم ربط مؤشرات Illumina Nextera XT (Illumina Inc. ، سان دييغو ، الولايات المتحدة الأمريكية) بالعينات في تفاعل PCR ثاني مع تطبيق نفس درجة حرارة التلدين كما في تفاعل تفاعل البوليميراز المتسلسل الأول ولكن مع سبع دورات فقط ، وتم تأكيد نجاح الربط بواسطة الرحلان الكهربائي للهلام (لـ بروتوكولات مفصلة انظر [34 ، 35]). تم قياس تركيزات الحمض النووي باستخدام مقياس التألق Qubit (تقنيات الحياة ، كارلسباد ، الولايات المتحدة الأمريكية) ، وتم دمج العينات في 40 ميكروليتر تجمع يحتوي على تركيزات متساوية من 100 نانوغرام لكل منهما. تم تحميل المسابح في هلام agarose بنسبة 1 ٪ ، وتشغيلها عند 90 فولت لمدة 45 دقيقة ، وتم استئصال العصابات من حجم amplicon المستهدف بشفرات حلاقة معقمة ، وتنقيتها باستخدام مجموعة GeneJet Gel Extraction (Life Technologies ، Carlsbad ، الولايات المتحدة الأمريكية) ، بعد تعليمات الشركة الصانعة. تم استخدام حجم شطف نهائي قدره 20 ميكرولتر. تم إجراء التسلسل عالي الإنتاجية (HTS) على Illumina MiSeq باستخدام كيمياء v2 (2 * 250 نقطة أساس ، 500 دورة ، بحد أقصى 20 مليون قراءة). تتألف الضوابط السلبية لتحليلات استقلاب الحمض النووي من استخراج تحكم سلبي واحد (تم استخراج أنبوب مجموعة نبات DNEasy فارغ من بين عينات الأمعاء العشر المتبقية) ، والتحكم السلبي PCR لكل amplicon والتحكم السلبي للربط لكل مجموعة من amplicons أثناء إعداد مكتبة مع مؤشرات Nextera XT. تم استخدام عناصر التحكم السلبية لإزالة جميع OTUs مع N (يقرأ) & lt = 5 × مجموع القراءات في عناصر التحكم السلبية (حيث يكون مجموع قراءات التحكم السلبية أكثر من 20 ٪ من عدد القراءات في العينات الفعلية). تم تجميع جميع العينات لكل amplicon بشكل منفصل باستخدام كميات متساوية من 100 نانوغرام لكل منهما. تم تحميل جميع العينات على خلية تدفق ميسيك v2 2x250 bp من بين عينات أخرى. تم تعيين تركيزات الحمض النووي النهائية لمجمعات amplicon على 380،000 قراءة أولية إجمالية (190،000 قراءة نهائية مقترنة). كان التركيز النهائي للمكتبة الكاملة 1.4 نانوغرام. يتم إيداع بيانات Metabarcoding ويمكن الوصول إليها على GenBank ، BioProject ID PRJNA593715 (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/bioproject/593715).


محتويات

في شكلها البالغ ، فريتيلاري الخليج عبارة عن فراشة متوسطة الحجم لها أجنحة أمامية ممتدة ومدى جناحيها من 6.5 إلى 9.5 سم. تُظهر هذه الفراشة إزدواج الشكل الجنسي لأن الإناث عادة ما تكون أكبر في الحجم من الذكور. الجانب السفلي من الأجنحة بني اللون ومرقط بنقاط بيضاء فضية. على النقيض من ذلك ، فإن الطبقة السطحية العليا للأجنحة ذات لون برتقالي غامق مع وجود خطوط سوداء عبرها. بالإضافة إلى اختلاف الحجم بين الجنسين ، عادة ما تكون الإناث أغمق في اللون وتكون أكثر تميزًا بالخطوط السوداء مقارنة بالذكور. [2] [6]

توجد فريتيلات الخليج بشكل أساسي في الأجزاء الجنوبية من الولايات المتحدة ، مثل العديد من مناطق تكساس وفلوريدا. ومع ذلك ، يمكن أن يمتد نطاق هذه الفراشة من جنوب الولايات المتحدة إلى أجزاء من المكسيك وأمريكا الوسطى وأحيانًا حتى أجزاء من أمريكا الجنوبية. تم العثور عليها أيضًا في هاواي. [2] [6] شائع بشكل متزايد في كاليفورنيا الوسطى فالي منذ حوالي 2010.

توجد فريتيلز الخليج في الموائل المفتوحة ، كما هو الحال في المناطق المشمسة باعتدال بالقرب من الأراضي العشبية المفتوحة والحدائق والأراضي الحرجية. كما تُرى الحشوات الخليجية بشكل شائع في حدائق الفراشات المحلية عبر الولايات المتحدة [2] [6]

نباتات كاتربيلر الغذائية - وتسمى أيضًا بالنباتات المضيفة - بالنسبة لأطعمة الخليج هي أعضاء في الجنس باسيفلورا. الفراشات البالغة تستخدم رحيق من أزهار عديدة منها لانتانا النباتات. غالبًا ما يُطلق على النباتات المضيفة لـ Passiflora اسم كروم العاطفة في بعض مقاطعات تكساس حيث يكون عدد سكان هذه الفراشة مرتفعًا ، وسوف تتغذى الحشوات الخليجية على أنواع معينة مثل Passiflora lutea و Passiflora affinis. تعتبر نباتات كرمة العاطفة هذه نباتات مضيفة مناسبة لأنها توفر بنية جيدة لموائل اليرقات المضيفة والتي تمكن مجموعات الشباب من الحشوات الخليجية من الرعاية والحماية بشكل كافٍ. يعتبر دور النباتات المضيفة أيضًا جزءًا لا يتجزأ من وضع البيض في فريتيلرات الخليج ، حيث تضع إناث الفراشات بيضها على النبات المضيف أو بالقرب منه. [7] [8]

تحرير Oviposition

تبدأ عملية وضع البيض في فريتيلرات الخليج مع تحليق الفراشة الأنثوية على ارتفاع منخفض وفوق الغطاء النباتي بقليل (على الأرجح النباتات المضيفة النموذجية مثل باسيفلورا إنكارناتا أو Passiflora lutea) ويستمر حتى تتوقف الأنثى فوق نبات فردي. بعد ذلك ، تقوم الأنثى بالاتصال بالنبات المضيف عن طريق هبوط الأنثى ثم ترسب البويضة لإكمال عملية وضع البيض. من المرجح أن يكون العامل الدافع وراء سبب تواجد الأنثى على النبات المضيف أو بالقرب منه بسبب التركيب الكيميائي المحدد للجنس المحدد للنبات المضيف. بمجرد أن تتعرف الأنثى على التركيب الكيميائي (باستخدام الهوائيات) ، فإن الأنثى سوف تبيض. [6]

تحرير البيض

البيض صغير الحجم وشكله كروي ، تضع أنثى فريتيل الخليج الأنثوية البيض بشكل فردي واحدًا تلو الآخر على النبات المضيف أو بالقرب منه. تشمل النباتات المضيفة النموذجية عدة أنواع من الجنس باسيفلورا. يتحول لون البيض في البداية إلى اللون الأصفر بعد ترسيب الأنثى له ، ويتحول لونه تدريجيًا إلى اللون الأحمر المائل إلى البني على مدار الأربع وعشرين ساعة التالية. متوسط ​​مدة مرحلة البيض في دورة حياة فريتيلز الخليج ما بين ثلاثة إلى خمسة أيام تقريبًا اعتمادًا على درجة حرارة البيئة. يوجد البيض عادة على الأسطح العلوية لأوراق النبات المضيف ، ولكن يمكن العثور على بعضها على الجانب السفلي من الأوراق أيضًا. [2] [6]

تحرير اليرقة

في المظهر ، تكون اليرقات برتقالية داكنة مع أشواك سوداء صغيرة تبرز من الجسم. تشتمل مراحل اليرقات من فريتيل الخليج على خمسة أطوار ، ولكل منها إطار زمني متغير. بعد أن يفقس البيض ، تأكل اليرقات الجديدة أغلفة البيض كغذاء. في النهاية ، ستنتقل اليرقات إما إلى أكل بيض آخر أو أجزاء من النبات المضيف للتغذية. خلال مراحل الطور الثلاثة الأولى ، تستهلك اليرقات الأوراق بشكل أساسي وتتغذى بعيدًا عن هوامش أوراق النبات المضيف. تعتمد كمية الورقة ومدى عمق الطبقات التي ستأكلها اليرقة على نوع الورقة (أي سمكها أو نحافتها). خلال المرحلتين الأخيرتين من العمر ، تستهلك اليرقات الأوراق بشكل أساسي وتتغذى على هوامش الأوراق. خلال عملية الحصول على الطعام هذه ، تعتمد درجة تناول ورقة معينة قبل التخلي عنها لصالح ورقة جديدة أخرى إلى حد كبير على ما إذا كان الطعام متوفرًا أو نادرًا. يتراوح متوسط ​​مدة طور اليرقات بين 11 و 16 يومًا حسب درجة الحرارة. [2] [6]

تحرير بوبا

في الشكل والمظهر ، لا يمكن التعرف على شرانق فريتيل الخليج متجانسة ، ولكنها يمكن أن تختلف في كل من اللون والحجم المادي. متوسط ​​مدة طور العذراء في الحشوات الخليجية يتراوح تقريبًا بين 7 و 12 يومًا اعتمادًا على درجة حرارة البيئة. ترتبط درجات الحرارة الأكثر برودة بإطار زمني أطول بينما ترتبط درجات الحرارة الأكثر دفئًا بوقت أقصر لتطور العذراء. [2] [6]

تحرير التحول

عندما يحين الوقت الذي تخلق فيه اليرقة شرنقتها ، فإنها تتحول إلى لون رمادي وتبدأ في تدوير مادة تشبه الحرير إلى كرة فوق سطح مرن أو على سطح مرن. ثم يعلق طرفه الخلفي على كتلة "الحرير" ويتدلى رأسًا على عقب في وضع "j". من خلال تقلصات صغيرة للعضلات تبدأ في التخلص من جلدها ورأسها كاشفة عن شكل تان وردي ناعم. يتصلب الشكل الناعم بسرعة ويصبح بنيًا رماديًا. يبقى الشرنقة في هذا الشكل لمدة أحد عشر إلى واحد وعشرين يومًا. بعد تلك الفترة الزمنية ، يبدأ شق صغير في التكون عند طرف الشرنقة ليكشف عن رأس الفراشة. يستمر في التحرك ببطء لأسفل من خلال قاع الشرنقة حتى تصبح أرجلها حرة في التشبث بقشرة الشرنقة وسحب نفسها إلى الخارج. تمامًا مثل فراشة الملك ، تبدأ في ضخ السوائل من بطنها المنتفخ إلى أجنحتها المنكمشة. عندما يتمدد أجنحتها بالكامل فإنها تطلق السوائل الزائدة من بطنها. خلال العشر إلى الخمس عشرة دقيقة القادمة ، يبقى ثابتًا ويسمح لجناحيه بالجفاف. أخيرًا ، ترفع أجنحتها وتطير. [6]

تحرير الكبار

بعد اكتمال عملية الخروج من الشرنقة ، تجفف الفراشة أجنحتها وتطير في النهاية لأول مرة. في السكان البالغين ، تكون نسبة الجنس التقريبية بين الذكور إلى الإناث تقريبًا واحدًا إلى واحد ، ولكن هناك حاجة إلى مزيد من الدراسات القائمة على الملاحظة حول فريتيلز الخليج لدعم فرضية المساواة بين الجنسين بين الجنسين ثنائي الشكل بشكل أفضل. يبلغ متوسط ​​مدة مرحلة البلوغ ما يقرب من 14 إلى 27 يومًا بعد خروج الفراشة من الشرنقة اعتمادًا على جودة البيئة (أي عامل توافر الطعام ، ووجود الحيوانات المفترسة ، والتنافس بين الأفراد). [2] [6]

نظرًا لأن فلوريدا تشكل مكونًا رئيسيًا من النطاق الجغرافي لهذه الفراشة ، فإن نمط هجرة حشوات الخليج في فلوريدا موثق جيدًا. في فلوريدا ، تقوم خطوط الطيران الخليجية برحلتين رئيسيتين خلال العام. تتضمن الهجرة الرئيسية الأولى مجموعات ضخمة من الفراشات تطير شمالًا بينما تتضمن الهجرة الثانية الفراشات تتحرك جنوبًا في جميع أنحاء الولاية ، خاصة في جميع أنحاء شبه جزيرة فلوريدا. تحدث الهجرات الأولى والثانية في الربيع والخريف على التوالي. [2] [6] [9]

تمتلك كل من حشوات الخليج من الذكور والإناث غددًا دفاعية معينة تقع على بطونهم تعمل كآلية دفاع ضد الحيوانات المفترسة ، وخاصة الحيوانات المفترسة للطيور مثل الطيور. عندما تشعر الفراشات بالخطر في المنطقة أو تتعرض للاضطراب فجأة ، تنبعث من هذه الغدد رائحة مميزة وواضحة تتكون من عدة أنواع مختلفة من المواد الكيميائية ، مثل 6-methyl-5-hepten-2-one و hexadecyl acetate. يؤدي جمع هذه المركبات الكيميائية المنبعثة من الغدد إلى تفضيل الطيور تجنب الفريتيلز الخليجية لصالح الفرائس الأخرى. في بعض الحالات ، يمكن في بعض الأحيان أن تخضع حشوات الخليج للمنافسة والقتال من أنواع الفراشات الأخرى ، مثل Heliconius Charithonia vazquezae و درياس يوليا مودراتا عندما تتكاثر هذه الأنواع في مناطق متشابهة وضمن نفس النطاق الجغرافي. [3]

سلوك المغازلة تحرير

تبدأ العملية العامة لتفاعل التودد النموذجي عندما يطير الذكر ويهبط بالقرب من أنثى جاثمة ، والتي من المرجح أن تطفو على نبات مضيف ، مثل عدة أنواع من جنس Passiflora. بمجرد هبوط الذكر ، يتخذ الذكر موقعًا بجوار الأنثى برؤوسهم معًا وجسمهم بزاوية 45 درجة. في هذا الوقت ، ينخرط الذكر في إجراء محدد يسمى عرض تصفيق الجناح حيث يقوم الذكر بالتصفيق المستمر بجناحيه مفتوحًا ومغلقًا. خلال هذا الوقت ، يتم وضع هوائيات الأنثى بين جناحي الفتح والغلق. بعد أن يتوقف الذكر عن حركة الجناح ، يتحرك الذكر إلى وضع يسهل الاتصال التناسلي مع الأنثى. يبلغ متوسط ​​مدة عملية الجماع بما في ذلك عرض تصفيق الجناح حوالي 11 ثانية. [8] [10]

تفاعلات الذكور والإناث تحرير

تحرير الفيرومونات

يلعب إطلاق الفيرومونات من قبل ذكور فريتيل الخليج دورًا مهمًا في عملية التزاوج والتودد. أظهرت الدراسات أن الذكور تمتلك هياكل محددة على أجنحتها الظهرية التي تشارك في إنتاج وإطلاق الفيرومونات الكيميائية في نهاية المطاف. من المحتمل أن المسام الموجودة على أجنحة ذكور الفراشات تنقل الفيرومونات إلى السطح حيث يمكن إطلاق المواد الكيميائية ويمكن أن تؤثر بعد ذلك على الإناث. يرتبط استخدام الفيرومونات في عملية التزاوج بفكرة اختيار الشريك. [6] [4]

هدايا العرس تحرير

إلى جانب الفيرومونات الكيميائية ، يلعب وجود الهدايا الزوجية دورًا مهمًا في عملية التزاوج والتودد. أثناء الجماع الجسدي ، يقوم الذكور بنقل المواد المغذية للإناث. يمكن استخدام هذه العناصر الغذائية الإضافية التي تُعطى للإناث من قبل الأنثى لمصلحتها أثناء عملية تكوين البويضات. يرتبط استخدام هدايا الزواج في عملية التزاوج ، خاصةً عندما تتزاوج الإناث مع ذكور متعددين ، بفكرة اختيار الإناث في تحديد تخصيب البويضة. [6] [4]


وصف مفصل

(Stehr et al. 1987، Hodges 1999)

الرأس: يكون الرأس شبه متقلب (الشكل 3 ، الشكل 6 ، الشكل 13) ، إلى النذير (الشكل 6 ، الشكل 7) في عمال مناجم الأوراق ، وعادة ما يكون مصطبغًا بشدة وناعمًا (الشكل 1 ، الشكل. 3 ، الشكل 4 ، الشكل 6 ، الشكل 13 ، الشكل 14). يكون الجزء الأمامي من الفص الجبهي أطول من عرضه ، ويمتد عادةً من نصف إلى أربعة أخماس حتى الشق فوق القحف (الشكل 4 ، الشكل 15) ، ولكن على طول الطريق في بعض الأنواع النبيلة (الشكل 10). عادة ما تكون الخطوط ecdysial متميزة ، قريبة من الغرز الأمامية الأمامية ، لكنها تتجه للخلف للخلف وعادة ما تلتقي عند الشق فوق الجمجمة (الشكل 4 ، الشكل 14). ستة الجذعية مرتبة في قوس عادي ، مع عدم وجود. 6 كونه ذليل (الشكل 3). مجموعة الرأس L1 عادة ما تكون أبعد من مجموعة الرأس A3 من A3 من مجموعة الرأس A2. قد يكون التكامل هو السبينولوز (الشكل 9).

الصدر: يكون درع البروستات مصطبغًا ومتميزًا (الشكل 3 ، الشكل 4 ، الشكل 6 ، الشكل 7 ، الشكل 10 ، الشكل 13 ، الشكل 14). العدد القياسي للكرات الأولية موجود. إن المجموعة L قبل التمرين على T1 هي trisetose ، وعادة ما تكون المجموعة الوسطى أقل بشكل واضح (الشكل 3 ، الشكل 16). تحتوي المجموعة SV على مجموعتين على T1 ، وواحدة على T2 و T3. عادةً ما يتم ترتيب T2 و T3 مع مجموعات ترتيب وتكون L1 أقرب إلى L2 من L3 (الشكل 16).

البطن: D1 و D2 عريضان من خط الوسط ، وعادة ما تكون D2s أبعد. SD1 على A1-A7 هو ظهري (الشكل 16) إلى anterodorsad من spiracle. يقع L1 و L2 أسفل المعجزة ويقتربان من بعضهما البعض ، ويكون L3 أعلى أو أقل من الهامش الذيل من طول الساق. تكون مجموعة SV دائمًا ثنائيًا تقريبًا على A1 ، و trisetose على A2-A6 ، و bisetose على A7 ، وعادة ما تكون غير متجانسة على A8 (نادرًا ما يكون ثنائيًا) (الشكل 16). عادة ما يكون SD1 على A8 ظهرًا (الشكل 16) أو anterodorsad إلى spiracle (نادرًا ما يكون الأمامي). يحتوي A9 على D1 أدناه وعادة ما يصطف مع D2 و SD1 (الشكل 16) ، والتي قد تكون شبيهة بالشعر (tonosensillum) L1 و L2 متقاربتان معًا على نفس الصنوبر ، مع L3 قريبًا أو بعيدًا أو غائبًا عن L setae الأخرى. SV setae are rarely absent (Fig. 16). A3-A6 prolegs are short (Fig. 6) to 2X as long as the width of the planta at the crochet level. The crochets are arranged in a uni-, partially biordinal circle (Fig. 5) or penellipse (Fig. 15), and may be, rarely, reduced in number or to small lumps (as in the Australian pest species Sitotroga cerealella (Angoumois grain moth)), or almost to 2 transverse rows (e.g. Exoteleia (Holarctic)) or vestigial, or absent (e.g. the Holarctic genera, Metzneria and Isophrictus ). Prolegs sometimes each have a sclerotised collar and/or with a sclerotised, central foot patch.

A10 usually has the standard complement of setae (Fig. 16) with secondary setae present in a few species, such as the peach twig borer, Anarsia lineatella (Fig. 2). Prolegs are normal, with transverse rows of uni- or biordinal crochets (Fig. 17) that may be divided by a gap, but are rarely reduced or absent. An anal fork is sometimes present.


The pupa or chrysalids possess shiny spots, often seen hanging with their head downwards.

Sexual Dimorphism: الحالي

اللون والمظهر: The common colorations of the butterflies of this family include orange, brown, black and yellow, whereas, blue and purple colored butterflies also exist, though rarely. The shapes of the wings differ, varying from one species to the other. Some may have irregular margins like commas and angle wings, whereas certain species even have tail-like projections on their wings.


الوصف والتعريف

يرقة

The mature larva has a green to bluish-green coloration, with a black ring and small black pints around the spiracles. It also has a lateral row of dashes and a yellow mid-dorsal line, both in yellow. As an adaptation for camouflage, their green coloration makes them almost invisible to predators, when they sit on the leaves.

The chrysalis is greenish in color that changes to pale green to light brown with aging and remain attached to the host plant leaves.

الكبار الفراشة

Sexual Dimorphism: الحالي

Color and Appearance: When the wings are open, the dorsal side in the male displays a creamy white coloration with a single black spot on the primary wings, whereas the female is rather pale yellowish, with two black spots placed somewhere around the center. When the wings are closed, the ventral side exhibits a yellowish tinge along with some black speckles.

Average wingspan: 32 to 47 mm (1.3 to 1.9 in)

نمط الرحلة: Rapid and erratic

Yellow in color with an elongated, bottle-like shape and an uneven surface, laid one at a time


Checkerspot

Female checkerspots typically lay their eggs in clusters on a plant that serves as food for the larvae. Common food plants include plantain, beardtongue, Indian paintbrush, aster, rabbit brush, and other members of the figwort and sunflower families. The eggs hatch in a few weeks and the young caterpillars that emerge feed together in a cluster some species make a retreat of silk webbing similar to that of tent caterpillars. Checkerspot caterpillars are usually black or dark brown, sometimes with stripes of orange or other colors, and have ornamented spines along their backs. The caterpillars feed and molt several times over a period of several weeks. They spend the winter, curled up in a leaf or other protected site. In spring, they form a pupa inside a protective capsule, or chrysalis, and begin to change into adult butterflies. The speckled, camouflaged chrysalis hangs from a leaf or branch. The complete adult butterfly emerges in early summer and begins a new cycle.

By studying checkerspots, scientists have learned a great deal about the ecology, evolution, and conservation of insects and other animals. Many of the plants eaten by checkerspot caterpillars contain toxic chemicals called iridoid glycosides. These chemicals deter most other insect plant feeders, but checkerspot butterflies are attracted to plants with iridoid glycosides, and the chemicals actually stimulate more rapid feeding by checkerspot caterpillars. Some species of checkerspot caterpillars retain these chemicals within their bodies, making themselves unappetizing to birds and other potential predators.

Detailed studies of checkerspot genetics and ecology have shown that different populations within a single species may vary in their wing pattern and in their relationship to their environment. For example, Chalcedon checkerspot butterflies from different populations prefer to lay their eggs and feed on distinctly different host plants. Such findings emphasize that scientists need to consider the ecological characteristics of populations within each species. This is an important concept in conserving species and is one reason why biologists have focused increasingly on protecting distinctly different populations or subspecies.

Scientists have also shown that some checkerspot populations live in isolated patches of habitat where food and nectar resources are located, with occasional movement of individuals between the patches. If the butterflies within a particular patch become extinct, the empty patch will be recolonized after a period of time by butterflies moving from nearby patches. Although not all patches of habitat are always occupied by the butterflies, the butterfly population in the region as a whole persists as a result of this pattern of extinction and recolonization of local patches. A regional population may decline if occasional movement between the patches is prevented by disturbances such as land development. A population may also be in jeopardy if patches of habitats in a region are destroyed, even if that species does not currently occupy some of the habitat patches. Loss of critical habitat patches is now threatening the existence of many butterfly populations, including some checkerspots.

Scientific classification: Checkerspots are included in the genera Euphedryas and Chlosyne in the butterfly family Nymphalidae. The Chalcedon checkerspot is Euphedryas chalcedona. Checkerspots are closely related to the crescent and patch butterflies.


شاهد الفيديو: تشخص أعطال معدات كاتربيلر مع برنامج Caterpillar ET 2017A free for Download مجانى (كانون الثاني 2022).